| 中文摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第1章 绪论 | 第9-26页 |
| 1.1 益生菌 | 第9-13页 |
| 1.1.1 益生菌的定义 | 第9-10页 |
| 1.1.2 益生菌的分类 | 第10页 |
| 1.1.3 益生菌的作用 | 第10-12页 |
| 1.1.4 益生菌的应用 | 第12页 |
| 1.1.5 副干酪乳杆菌 | 第12-13页 |
| 1.2 微胶囊技术 | 第13-18页 |
| 1.2.1 微胶囊概念 | 第13页 |
| 1.2.2 微胶囊制备的主要材料 | 第13-14页 |
| 1.2.3 微胶囊技术的研究进展 | 第14页 |
| 1.2.4 微胶囊技术的作用 | 第14-15页 |
| 1.2.5 微胶囊的制备方法 | 第15-18页 |
| 1.3 溃疡性结肠炎 | 第18-21页 |
| 1.3.1 溃疡性结肠炎的概述 | 第18-19页 |
| 1.3.2 溃疡性结肠炎的治疗进展 | 第19页 |
| 1.3.3 与结肠炎相关的肠道菌群 | 第19-21页 |
| 1.4 分子生物学技术在肠道菌群分析中的应用 | 第21-24页 |
| 1.4.1 变性梯度凝胶电泳技术(DGGE) | 第22页 |
| 1.4.2 16SrRNA或16SrDNA检测 | 第22-23页 |
| 1.4.3 荧光原位杂交 | 第23页 |
| 1.4.4 实时荧光定量PCR | 第23-24页 |
| 1.5 本文的立题背景和研究内容 | 第24-26页 |
| 第2章 副干酪乳杆菌HD1.7微胶囊制备及质量评价 | 第26-42页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.1 菌种 | 第26页 |
| 2.1.2 培养基配方 | 第26页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第27页 |
| 2.2 试验方法 | 第27-30页 |
| 2.2.1 菌种的活化 | 第27-28页 |
| 2.2.2 菌悬液制备 | 第28页 |
| 2.2.3 微胶囊壁材与副干酪乳杆菌HD1.7的生物相容性 | 第28页 |
| 2.2.4 喷雾干燥工艺优化选择 | 第28-29页 |
| 2.2.5 微胶囊质量评价 | 第29-30页 |
| 2.2.6 微胶囊在模拟人工胃肠环境中的耐受性 | 第30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-41页 |
| 2.3.1 微胶囊壁材与副干酪乳杆菌HD1.7的生物相容性 | 第30-31页 |
| 2.3.2 喷雾干燥工艺优化结果 | 第31-36页 |
| 2.3.3 微胶囊质量评价 | 第36-38页 |
| 2.3.4 微胶囊在模拟人工胃肠环境中的耐受性 | 第38-41页 |
| 2.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第3章 副干酪乳杆菌HD1.7微胶囊对小鼠溃疡性结肠炎肠道菌群的影响 | 第42-66页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第42-44页 |
| 3.1.1 主要生化试剂与试剂盒 | 第42页 |
| 3.1.2 引物序列 | 第42-43页 |
| 3.1.3 试剂的配制 | 第43页 |
| 3.1.4 材料及主要仪器 | 第43-44页 |
| 3.2 试验方法 | 第44-49页 |
| 3.2.1 溃疡性结肠炎小鼠模型的构建 | 第44-45页 |
| 3.2.2 粪便DNA的提取 | 第45-46页 |
| 3.2.3 常规PCR | 第46-48页 |
| 3.2.4 实时荧光定量PCR | 第48-49页 |
| 3.3 结果与分析 | 第49-64页 |
| 3.3.1 溃疡性结肠炎小鼠构建成功的表现 | 第49-52页 |
| 3.3.2 粪便DNA提取和PCR产物结果 | 第52-54页 |
| 3.3.3 优势菌群的变化 | 第54-57页 |
| 3.3.4 有益菌的变化 | 第57-62页 |
| 3.3.5 有害菌的变化 | 第62-64页 |
| 3.4 本章小结 | 第64-66页 |
| 3.4.1 构建DSS诱导的溃疡性结肠炎小鼠 | 第64页 |
| 3.4.2 肠道菌群的变化 | 第64-66页 |
| 第4章 讨论 | 第66-70页 |
| 4.1 喷雾干燥制备副干酪乳杆菌HD1.7微胶囊工艺的优化选择 | 第66-67页 |
| 4.2 微胶囊的保存条件 | 第67页 |
| 4.3 微胶囊灌胃溃疡性结肠炎小鼠后肠道菌群变化 | 第67-70页 |
| 第5章 结论 | 第70-72页 |
| 参考文献 | 第72-80页 |
| 在校期间参与的科研活动 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
