致谢 | 第6-8页 |
摘要 | 第8-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
1. 文献综述 | 第13-32页 |
1.1 转基因玉米研究进展 | 第15-26页 |
1.1.1 引言 | 第15-16页 |
1.1.2 转基因抗草甘膦( Glyphosate )玉米研究进展 | 第16-21页 |
1.1.2.1 草甘膦及其在杂草防治中的应用 | 第16-17页 |
1.1.2.2 草甘膦的杂草防治的作用机理 | 第17-18页 |
1.1.2.3 作物抗草甘膦策略 | 第18-21页 |
1.1.2.4 转EPSPS基因抗除草剂玉米研究现状 | 第21页 |
1.1.3 玉米产量相关性状 | 第21-26页 |
1.1.3.1 株高 | 第22-24页 |
1.1.3.2 玉米穗和颗粒 | 第24-26页 |
1.2 ZmTE1家族基因研究进展 | 第26-30页 |
1.2.1 TE1基因的发现 | 第26-28页 |
1.2.2 TE1基因的表达 | 第28-30页 |
1.3 本研究的目的和意义 | 第30-32页 |
2. 材料与方法 | 第32-52页 |
2.1 植物材料 | 第32页 |
2.2 菌株和质粒载体 | 第32-33页 |
2.3 主要工具酶 | 第33页 |
2.4 常用试剂、核酸、蛋白分子质量及试剂盒 | 第33页 |
2.5 培养基的配制 | 第33页 |
2.6 常用生化试剂和溶液 | 第33页 |
2.7 仪器 | 第33-34页 |
2.8 实验方法 | 第34-51页 |
2.8.1 分子生物学实验方法 | 第34-49页 |
2.8.1.1 基因组DNA提取 | 第34页 |
2.8.1.2 PCR技术 | 第34-36页 |
2.8.1.3 凝胶回收 | 第36页 |
2.8.1.4 高保真酶扩增产物加A反应 | 第36-37页 |
2.8.1.5 连接反应 | 第37页 |
2.8.1.6 大肠杆菌感受态细胞的转化 | 第37-38页 |
2.8.1.7 挑单克隆细胞 | 第38页 |
2.8.1.8 质粒微量提取 | 第38页 |
2.8.1.9 酶切反应 | 第38-39页 |
2.8.1.10 大肠杆菌TG1感受态细胞的制备 | 第39-40页 |
2.8.1.11 Genome Walker | 第40-43页 |
2.8.1.12 Western blot | 第43-44页 |
2.8.1.13 Southern blot | 第44-47页 |
2.8.1.14 EPSPS速测 | 第47页 |
2.8.1.15 总RNA提取、纯化和cDNA第一链的合成 | 第47-48页 |
2.8.1.16 qRT PCR | 第48-49页 |
2.8.2 农艺性状和产量统计方法 | 第49-50页 |
2.8.2.1 农艺性状统计 | 第49-50页 |
2.8.2.2 产量性状统计 | 第50页 |
2.8.3 统计方法 | 第50-51页 |
2.9 温室转基因玉米植株杭性测定 | 第51-52页 |
3. 结果与分析 | 第52-69页 |
3.1 转基因玉米PCR鉴定 | 第52-53页 |
3.2 T -DNA插入位点确定 | 第53-56页 |
3.3 转基因玉米拷贝数鉴定 | 第56-57页 |
3.4 转基因玉米ZmTE1的相对转录水平分析 | 第57-58页 |
3.5 转基因玉米G10evo蛋白表达分析 | 第58-60页 |
3.6 转基因玉米表型差异分析 | 第60-62页 |
3.7 转基因玉米农艺性状统计分析 | 第62-67页 |
3.7.1 叶片数量和株高 | 第62-64页 |
3.7.2 节间距和节间数量 | 第64-65页 |
3.7.3 相邻叶间数量 | 第65页 |
3.7.4 叶间距离 | 第65-67页 |
3.8 转基因玉米产量性状分析 | 第67-69页 |
4 总结与讨论 | 第69-73页 |
4.1 总讨论 | 第69-71页 |
4.2 创新之处 | 第71-72页 |
4.3 展望 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-81页 |
附录 | 第81-87页 |
附录A 常用培养基配方 | 第81-82页 |
附录B 常用生化试剂、溶液 | 第82-87页 |
常用生化试剂 | 第82页 |
溶液 | 第82-87页 |
附录C 常用仪器 | 第87页 |