摘要 | 第10-13页 |
Abstract | 第13-15页 |
縮略词表 | 第16-19页 |
第一章 类胡萝卜素的合成与调控研究进展 | 第19-43页 |
1 课题的提出 | 第19-20页 |
2 植物类胡萝卜素的相关研究进展 | 第20-36页 |
2.1 类胡萝卜素生理功能 | 第20-21页 |
2.2 植物类胡萝卜素代谢途径 | 第21-28页 |
2.2.1 前体合成 | 第22-23页 |
2.2.2 直链态类胡萝卜素合成 | 第23-24页 |
2.2.3 环氧化分支 | 第24-27页 |
2.2.4 其他支路 | 第27-28页 |
2.3 植物类胡萝卜素的合成与调控 | 第28-33页 |
2.3.1 转录调控 | 第28-31页 |
2.3.2 转录后调控 | 第31-32页 |
2.3.3 库源调控 | 第32-33页 |
2.4 类胡萝卜素与激素代谢的相关性研究 | 第33-36页 |
2.4.1 ABA对类胡萝卜素的调节 | 第33-34页 |
2.4.2 GA对类胡萝卜素的调节 | 第34页 |
2.4.3 JA对类胡萝卜素的调节 | 第34-35页 |
2.4.4 IAA对类胡萝卜素的调节 | 第35页 |
2.4.5 乙烯对类胡萝卜素的调节 | 第35-36页 |
3 表达谱和代谢组技术的发展及利用 | 第36-41页 |
3.1 表达谱芯片技术的发展 | 第36页 |
3.2 表达谱芯片技术在植物研究中的应用 | 第36-38页 |
3.3 代谢组技术的发展 | 第38-39页 |
3.4 代谢组技术在植物研究中的应用 | 第39-41页 |
4 愈伤组织的保存及利用 | 第41-43页 |
第二章 光暗处理对不同品种柑橘愈伤组织中类胡萝卜素合成的影响 | 第43-53页 |
1 引言 | 第43-44页 |
2 材料与方法 | 第44-46页 |
2.1 实验材料 | 第44页 |
2.1.1 植物材料 | 第44页 |
2.1.2 主要生化试剂及仪器设备 | 第44页 |
2.2 试验方法 | 第44-46页 |
2.2.1 样品处理 | 第44页 |
2.2.2 类胡萝卜素含量的测定 | 第44-45页 |
2.2.3 Real-Time PCR分析基因表达 | 第45-46页 |
2.2.4 统计分析 | 第46页 |
3 结果与分析 | 第46-49页 |
3.1 四种愈伤组织在不同光照条件下中类胡萝卜素含量的变化 | 第46-48页 |
3.2 Real-Time PCR分析类胡萝卜素相关基因表达变化 | 第48-49页 |
4 讨论 | 第49-52页 |
4.1 不同基因型愈伤组织对光照敏感度不同 | 第49-50页 |
4.2 光照对柑橘愈伤组织中PSY表达量的影响 | 第50-51页 |
4.3 光照对红马叙葡萄柚愈伤组织中PDS表达量的影响 | 第51页 |
4.4 光照对柑橘愈伤组织中其他类胡萝卜素合成相关基因的影响 | 第51-52页 |
5 小结和展望 | 第52-53页 |
第三章 CPTA处理对红马叙愈伤组织中类胡萝卜素合成调控的研究 | 第53-78页 |
1 引言 | 第53-54页 |
2 材料与方法 | 第54-62页 |
2.1 实验材料 | 第54-55页 |
2.1.1 植物材料 | 第54页 |
2.1.2 主要生化试剂及仪器设备 | 第54-55页 |
2.2 试验方法 | 第55-62页 |
2.2.1 样品制备 | 第55页 |
2.2.2 表达谱芯片杂交和数据分析 | 第55-56页 |
2.2.3 差异基因的功能注释和分类 | 第56页 |
2.2.4 差异表达基因的BinGo分类分析 | 第56-57页 |
2.2.5 类胡萝卜素、激素、酶活及H_2O_2含量的测定 | 第57-60页 |
2.2.6 初生代谢物的测定及分析 | 第60-61页 |
2.2.7 次生代谢物的测定及分析 | 第61-62页 |
2.2.8 Real-Time PCR分析基因表达 | 第62页 |
3 结果与分析 | 第62-73页 |
3.1 CPTA处理后愈伤组织中表达谱差异基因统计 | 第62页 |
3.2 差异基因功能注释和分类 | 第62-66页 |
3.3 CPTA处理后愈伤组织中类胡萝卜素含量及相关合成基因表达量的变化 | 第66-67页 |
3.4 CPTA处理后愈伤组织中激素和H_2O_2含量的变化 | 第67-69页 |
3.5 CPTA处理后愈伤组织中代谢物含量的变化 | 第69-73页 |
3.5.1 CPTA处理后愈伤组织中初生代谢物含量的变化 | 第69-71页 |
3.5.2 CPTA处理后愈伤组织中次生代谢物含量的变化 | 第71-73页 |
4 讨论 | 第73-78页 |
4.1 CPTA处理后愈伤组织中总类胡萝卜素上升 | 第73页 |
4.2 CPTA处理后逆境相关激素和H_2O_2的含量降低 | 第73-74页 |
4.3 CPTA处理提高愈伤组织中次生代谢物 | 第74-76页 |
4.4 CPTA处理对愈伤组织中初生代谢物的影响 | 第76页 |
4.5 小结与展望 | 第76-78页 |
第四章 不同生长周期的愈伤组织中类胡萝卜素含量变化的研究 | 第78-98页 |
1 引言 | 第78页 |
2 材料与方法 | 第78-80页 |
2.1 实验材料 | 第78-79页 |
2.1.1 植物材料 | 第78页 |
2.1.2 主要生化试剂及仪器设备 | 第78-79页 |
2.2 试验方法 | 第79-80页 |
2.2.1 样品制备 | 第79页 |
2.2.2 表达谱芯片分析 | 第79页 |
2.2.3 愈伤组织中类胡萝卜素及H_2O_2含量的测定 | 第79-80页 |
2.2.4 愈伤组织中初生代谢物的测定 | 第80页 |
2.2.5 Real-Time PCR分析基因表达 | 第80页 |
3 结果与分析 | 第80-91页 |
3.1 不同生长周期过程中表达谱差异对比统计 | 第80-81页 |
3.2 Real-Time PCR验证基因表达 | 第81-82页 |
3.3 差异基因功能注释和分类 | 第82-88页 |
3.4 不同生长周期愈伤组织中初生代谢物的变化 | 第88-90页 |
3.5 不同生长周期愈伤组织中类胡萝卜素及H_2O_2含量的变化 | 第90-91页 |
4 讨论 | 第91-97页 |
4.1 愈伤组织在生长后期呈现衰老趋势 | 第92页 |
4.2 糖源匮乏引起碳源流向重新分配 | 第92-93页 |
4.3 衰老愈伤组织中转录因子的改变 | 第93-94页 |
4.4 TCA为细胞提供能量 | 第94-96页 |
4.5 H_2O_2含量在衰老愈伤组织中升高 | 第96-97页 |
5 小结与下一步设想 | 第97-98页 |
第五章 糖饥饿对愈伤组织中类胡萝卜素合成影响的研究 | 第98-109页 |
1 引言 | 第98-99页 |
2 材料与方法 | 第99-100页 |
2.1 实验材料 | 第99页 |
2.1.1 植物材料 | 第99页 |
2.1.2 主要生化试剂及仪器设备 | 第99页 |
2.2 试验方法 | 第99-100页 |
2.2.1 样品处理 | 第99页 |
2.2.2 类胡萝卜素含量的测定 | 第99页 |
2.2.3 Real-Time PCR分析基因表达 | 第99-100页 |
3 结果与分析 | 第100-105页 |
3.1 不同蔗糖、葡萄糖浓度处理对愈伤组织中类胡萝卜素含量的影响 | 第100-102页 |
3.2 不同蔗糖、葡萄糖浓度处理对愈伤组织中类胡萝卜素合成相关基因表达量的影响 | 第102-105页 |
4 讨论 | 第105-108页 |
4.1 最适于愈伤组织积累类胡萝卜素的糖分浓度有别于其他植物组织 | 第105-107页 |
4.2 糖分可能是愈伤积累类胡萝卜素的信号因子 | 第107-108页 |
5 小结及后续试验设想 | 第108-109页 |
第六章 激素对愈伤组织中类胡萝卜素合成影响的研究 | 第109-118页 |
1 引言 | 第109页 |
2 材料与方法 | 第109-111页 |
2.1 实验材料 | 第109-110页 |
2.1.1 植物材料 | 第109-110页 |
2.1.2 主要生化试剂及仪器设备 | 第110页 |
2.2 试验方法 | 第110-111页 |
2.2.1 样品处理 | 第110页 |
2.2.2 类胡萝卜素含量的测定 | 第110页 |
2.2.3 Real-Time PCR分析基因表达 | 第110-111页 |
3 结果与分析 | 第111-115页 |
3.1 不同激素处理对愈伤组织中类胡萝卜素含量的影响 | 第111-112页 |
3.2 不同激素处理对愈伤组织中类胡萝卜素合成相关基因表达量的影响 | 第112-115页 |
4 讨论 | 第115-117页 |
4.1 植物激素促进愈伤组织中类胡萝卜素的积累 | 第115-116页 |
4.2 激素相关基因可能是调控类胡萝卜素的关键 | 第116-117页 |
5 小结及后续试验设想 | 第117-118页 |
总讨论及未来展望 | 第118-120页 |
附录 攻读博士期间发表的论文 | 第120-121页 |
参考文献 | 第121-150页 |
附表 | 第150-154页 |
附表Ⅰ | 第150-151页 |
附表Ⅱ | 第151-154页 |
致谢 | 第154页 |