| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 第1章 绪论 | 第9-24页 |
| 1.1 课题的研究背景和意义 | 第9-10页 |
| 1.2 中枢神经损伤 | 第10-12页 |
| 1.2.1 脊髓损伤(SCI) | 第10-11页 |
| 1.2.2 创伤性脑损伤(TBI) | 第11-12页 |
| 1.3 透明质酸与神经系统 | 第12-14页 |
| 1.3.1 透明质酸(HA) | 第12页 |
| 1.3.2 HA在神经发育中的作用 | 第12-13页 |
| 1.3.3 基于透明质酸的神经修复研究 | 第13-14页 |
| 1.4 电场与神经细胞的迁移 | 第14页 |
| 1.5 神经干细胞移植与类神经组织的构建 | 第14-18页 |
| 1.5.1 神经干细胞与神经元再生 | 第14-16页 |
| 1.5.2 神经干细胞移植 | 第16-17页 |
| 1.5.3 类神经组织的体外构建 | 第17-18页 |
| 1.6 3D打印在神经组织工程中的应用 | 第18-22页 |
| 1.6.1 3D打印与生物墨水(Bio-inks) | 第18-19页 |
| 1.6.2 3D打印微型脑组织 | 第19-21页 |
| 1.6.3 3D打印目前存在的问题与瓶颈 | 第21-22页 |
| 1.7 本课题主要的研究内容 | 第22-24页 |
| 第2章 材料和方法 | 第24-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-26页 |
| 2.1.1 细胞系与实验动物 | 第24页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.4 主要实验试剂的配制 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-31页 |
| 2.2.1 扫描电子显微镜观察 | 第26页 |
| 2.2.2 鼠尾胶原的醋酸法提取 | 第26-27页 |
| 2.2.3 EDC法在海藻酸钠接枝RGD | 第27页 |
| 2.2.4 免疫荧光染色分析类神经组织 | 第27-28页 |
| 2.2.5 类神经组织的三维重建 | 第28页 |
| 2.2.6 流变仪对海藻酸钠的力学性能检测 | 第28-29页 |
| 2.2.7 Regenhu3D打印系统的使用 | 第29页 |
| 2.2.8 统计分析 | 第29-31页 |
| 第3章 体外类神经组织培养平台的搭建与优化 | 第31-54页 |
| 3.1 引言 | 第31-32页 |
| 3.2 不同水凝胶体系的比较优化 | 第32-34页 |
| 3.3 不同分子量透明质酸对神经干细胞生长迁移的影响 | 第34-37页 |
| 3.3.1 不同分子量透明质酸对神经干细胞成团性的影响 | 第35页 |
| 3.3.2 不同分子量透明质酸对神经干细胞迁移的影响 | 第35-37页 |
| 3.4 不同分子量透明质酸对凝胶体系弹性模量、电阻抗的影响 | 第37-40页 |
| 3.4.1 体系弹性模量的比较 | 第37页 |
| 3.4.2 体系电阻抗的比较 | 第37-40页 |
| 3.5 培养系统的完善和类神经组织构建 | 第40-44页 |
| 3.5.1 基底材料的选择与优化 | 第40-42页 |
| 3.5.2 不同时间节点类神经组织的生长状态 | 第42-44页 |
| 3.6 类神经组织的表征 | 第44-48页 |
| 3.6.1 共聚焦断层扫描对类神经组织的三维重建 | 第44-45页 |
| 3.6.2 SEM对类神经组织表观形貌的观察 | 第45-47页 |
| 3.6.3 免疫荧光染色对类神经组织中细胞种群的分析 | 第47-48页 |
| 3.7 讨论 | 第48-53页 |
| 3.8 本章小结 | 第53-54页 |
| 第4章 3D打印类神经组织纤维及用于体内修复的研究 | 第54-63页 |
| 4.1 引言 | 第54页 |
| 4.2 3D打印类神经组织纤维 | 第54-58页 |
| 4.2.1 不同形貌神经纤维组织的构建 | 第54-56页 |
| 4.2.2 单纤维类神经束的构建及表征 | 第56-58页 |
| 4.3 类神经组织用于体内修复的研究 | 第58-60页 |
| 4.3.1 皮层损伤模型的构建 | 第58-59页 |
| 4.3.2 移植修复实验 | 第59-60页 |
| 4.4 讨论 | 第60-62页 |
| 4.5 本章小结 | 第62-63页 |
| 结论 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
