| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第10-23页 |
| 1.1 课题来源 | 第10页 |
| 1.2 课题研究背景和目的及意义 | 第10页 |
| 1.3 国内外研究进展与分析 | 第10-21页 |
| 1.3.1 MarvelD1的结构与功能 | 第10-11页 |
| 1.3.2 氧化应激 | 第11-17页 |
| 1.3.3 代谢组学 | 第17-21页 |
| 1.4 论文研究内容 | 第21-22页 |
| 1.5 技术路线 | 第22-23页 |
| 第2章 材料与方法 | 第23-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1 小鼠模型 | 第23页 |
| 2.1.2 细胞模型 | 第23页 |
| 2.1.3 引物设计 | 第23-24页 |
| 2.1.4 分析软件与网站 | 第24页 |
| 2.1.5 实验试剂与耗材 | 第24-25页 |
| 2.1.6 主要实验设备 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-33页 |
| 2.2.1 小鼠基因型鉴定 | 第25-26页 |
| 2.2.2 氧化应激模型的构建与鉴定 | 第26-27页 |
| 2.2.3 样品的收集与预处理 | 第27页 |
| 2.2.4 LC-MS分析 | 第27-28页 |
| 2.2.5 代谢组学数据分析方法 | 第28-29页 |
| 2.2.6 质粒抽提 | 第29-30页 |
| 2.2.7 细胞培养 | 第30-31页 |
| 2.2.8 RNA抽提 | 第31-32页 |
| 2.2.9 逆转录 | 第32-33页 |
| 第3章 基于LC-MS的小鼠血清代谢谱图的获得及代谢轮廓分析 | 第33-40页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 基于LC-MS的小鼠血清代谢谱图的获得 | 第33-34页 |
| 3.3 小鼠血清代谢谱图的总体分析比较 | 第34-38页 |
| 3.3.1 不同周龄野生型小鼠血清代谢谱图的比较 | 第34-35页 |
| 3.3.2 野生型小鼠与MD1敲除型小鼠在正常饲养条件下的血清代谢谱图的比较 | 第35-36页 |
| 3.3.3 野生型小鼠在氧化应激诱导后的代谢谱图变化 | 第36-37页 |
| 3.3.4 MarvelD1敲除型小鼠在氧化应激诱导后的代谢谱图变化 | 第37-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38-39页 |
| 3.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 第4章 小鼠血清相关代谢物的筛选与鉴定 | 第40-47页 |
| 4.1 引言 | 第40页 |
| 4.2 小鼠血清样本差异代谢物的筛选与鉴定 | 第40-45页 |
| 4.2.1 不同周龄野生型小鼠血清代谢差异离子筛选与鉴定 | 第40-41页 |
| 4.2.2 野生型小鼠与MarvelD1敲除型小鼠血清代谢差异物的筛选与鉴定 | 第41-43页 |
| 4.2.3 野生型小鼠在氧化应激诱导后的代谢差异物的筛选与鉴定 | 第43-44页 |
| 4.2.4 MarvelD1敲除与氧化应激对小鼠代谢的代谢影响 | 第44-45页 |
| 4.3 讨论 | 第45-46页 |
| 4.4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第5章 小鼠血清相关代谢物比较及代谢通路分析 | 第47-56页 |
| 5.1 引言 | 第47页 |
| 5.2 野生型小鼠与MarvelD1敲除型小鼠血清代谢差异通路分析 | 第47-49页 |
| 5.3 野生型小鼠在正常饲养条件下与氧化应激诱导状态的代谢差异通路分析 | 第49-50页 |
| 5.4 MarvelD1敲除型小鼠在氧化应激诱导状态下的代谢差异通路分析 | 第50-54页 |
| 5.5 讨论 | 第54-55页 |
| 5.6 本章小结 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56页 |
| 展望 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
