前言 | 第4-6页 |
中文摘要 | 第6-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
第1章 绪论 | 第21-47页 |
1.1 心肌缺血再灌注损伤的研究 | 第22-32页 |
1.1.1 心肌细胞损伤的病理生理变化 | 第22-25页 |
1.1.1.1 心肌代谢发生改变 | 第22页 |
1.1.1.2 心肌缺氧引起的细胞损伤 | 第22-24页 |
1.1.1.3 微血管受损和无复流现象 | 第24页 |
1.1.1.4 心肌舒缩功能障碍 | 第24页 |
1.1.1.5 缺血-再灌注心律失常 | 第24-25页 |
1.1.2 心肌缺血再灌注损伤机制 | 第25-32页 |
1.1.2.1 氧自由基与心肌缺血再灌注损伤 | 第25-27页 |
1.1.2.2 钙超载与心肌缺血再灌注损伤 | 第27-31页 |
1.1.2.3 白细胞浸润与心肌缺血再灌注损伤 | 第31页 |
1.1.2.4 再灌注的速度和条件 | 第31-32页 |
1.2 心肌细胞损伤的分子机制 | 第32-40页 |
1.2.1 Fas | 第33页 |
1.2.2 Bcl-2 家族 | 第33-35页 |
1.2.3 Caspase 家族 | 第35-36页 |
1.2.4 PKC 家族 | 第36-38页 |
1.2.5 MAPK 信号 | 第38-40页 |
1.3 心肌缺血再灌注损伤的治疗 | 第40-44页 |
1.3.1 抗氧化剂的作用 | 第40-41页 |
1.3.2 抑制钙超载 | 第41页 |
1.3.3 抑制炎症及免疫的药物 | 第41-42页 |
1.3.4 增加心肌供血和供氧、改善心肌舒缩功能的药物 | 第42-43页 |
1.3.5 心肌预适应 | 第43页 |
1.3.6 心肌缺血的基因治疗 | 第43-44页 |
1.4 蒺藜皂苷的研究现状及单体的开发 | 第44页 |
1.5 本文的主要研究目的内容和意义 | 第44-47页 |
第2章 蒺藜皂苷对阿霉素损伤心肌细胞的保护作用 | 第47-58页 |
2.1.1 实验材料 | 第47-48页 |
2.1.1.1 药物与试剂 | 第47-48页 |
2.1.1.2 动物 | 第48页 |
2.1.1.3 仪器 | 第48页 |
2.1.2 实验方法 | 第48-52页 |
2.1.2.1 乳鼠心肌细胞的培养 | 第48-49页 |
2.1.2.2 实验分组 | 第49页 |
2.1.2.3 MTT 检测细胞存活率 | 第49页 |
2.1.2.4 培养液中生化指标测定 | 第49页 |
2.1.2.5 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第49页 |
2.1.2.6 Western blotting 检测心肌细胞内Caspase-3 表达 | 第49-51页 |
2.1.2.7 相关试剂的配制 | 第51-52页 |
2.1.2.8 统计学分析 | 第52页 |
2.1.3 实验结果 | 第52-57页 |
2.1.3.1 GSTT 对阿霉素损伤心肌细胞形态的影响 | 第52-53页 |
2.1.3.2 GSTT 对阿霉素损伤心肌细胞存活率的影响 | 第53-54页 |
2.1.3.3 GSTT 对阿霉素损伤心肌细胞培养液中心肌酶的影响 | 第54页 |
2.1.3.4 GSTT 对阿霉素损伤心肌细胞培养液中SOD、MDA、NO 的影响 | 第54-55页 |
2.1.3.5 GSTT 对阿霉素损伤心肌细胞凋亡率的影响 | 第55-56页 |
2.1.3.6 GSTT 对阿霉素损伤心肌细胞Caspase-3 的影响 | 第56-57页 |
2.1.4 小结 | 第57-58页 |
第3章 蒺藜皂苷单体活性筛选 | 第58-61页 |
3.1.1 实验材料 | 第59页 |
3.1.1.1 药物与试剂 | 第59页 |
3.1.1.2 动物 | 第59页 |
3.1.1.3 仪器 | 第59页 |
3.1.2 实验方法 | 第59-60页 |
3.1.2.1 乳鼠心肌细胞的培养 | 第59页 |
3.1.2.2 实验分组 | 第59页 |
3.1.2.3 细胞存活率测定 | 第59-60页 |
3.1.2.4 统计分析 | 第60页 |
3.1.3 结果 | 第60-61页 |
第4章 蒺藜皂苷单体B 对大鼠心肌缺血再灌注损伤保护作用研究 | 第61-90页 |
4.1 蒺藜皂苷单体B 对大鼠离体心脏缺血再灌注损伤的保护作用 | 第61-73页 |
4.1.1 实验材料 | 第61-62页 |
4.1.1.1 药品与试剂 | 第61-62页 |
4.1.1.2 动物 | 第62页 |
4.1.1.3 主要仪器 | 第62页 |
4.1.2 实验方法 | 第62-65页 |
4.1.2.1 大鼠离体心脏缺血再灌注损伤模型的建立 | 第62页 |
4.1.2.2 实验分组 | 第62-63页 |
4.1.2.3 冠脉流出液CK、AST、LDH 含量的检测 | 第63页 |
4.1.2.4 心肌组织SOD、MDA 含量的测定 | 第63页 |
4.1.2.5 心肌组织TTC 染色观察心肌梗死面积 | 第63页 |
4.1.2.6 病理形态学观察 | 第63页 |
4.1.2.7 TUNEL 法检测心肌细胞凋亡 | 第63-64页 |
4.1.2.8 免疫组织化学检测心肌组织PKCε表达 | 第64-65页 |
4.1.2.9 Western blotting 检测Bcl-2、Bax、Caspase-3、PKCε表达 | 第65页 |
4.1.2.10 统计学分析 | 第65页 |
4.1.3 结果 | 第65-71页 |
4.1.3.1 TTSMB 对冠脉流出液中心肌酶的影响 | 第65-66页 |
4.1.3.2 TTSMB 对SOD、MDA 含量的影响 | 第66页 |
4.1.3.3 TTSMB 对心肌梗死面积的影响 | 第66-67页 |
4.1.3.4 TTSMB 对缺血再灌注心肌组织病理形态的影响 | 第67-68页 |
4.1.3.5 TTSMB 对心肌细胞凋亡的影响 | 第68-69页 |
4.1.3.6 TTSMB 对心肌组织Bax、Bcl-2、Caspase-3 蛋白表达的影响 | 第69-70页 |
4.1.3.7 TTSMB 对心肌细胞PKCε表达的影响 | 第70-71页 |
4.1.3.8 TTSMB 对心肌组织磷酸化PKCε表达的影响 | 第71页 |
4.1.4 小结 | 第71-73页 |
4.2 蒺藜皂苷单体B 对心肌细胞缺氧复氧损伤的保护作用 | 第73-80页 |
4.2.1 实验材料 | 第73页 |
4.2.1.1 药品与试剂 | 第73页 |
4.2.1.2 动物 | 第73页 |
4.2.1.3 主要仪器 | 第73页 |
4.2.2 实验方法 | 第73-75页 |
4.2.2.1 乳鼠心肌细胞培养 | 第73页 |
4.2.2.2 实验分组 | 第73-74页 |
4.2.2.3 心肌细胞形态学变化 | 第74页 |
4.2.2.4 MTT 检测细胞存活率 | 第74页 |
4.2.2.5 培养液中生化指标测定 | 第74页 |
4.2.2.6 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第74页 |
4.2.2.7 Western blotting 检测Caspase-3 表达 | 第74页 |
4.2.2.8 统计学分析 | 第74-75页 |
4.2.3 实验结果 | 第75-79页 |
4.2.3.1 TTSMB 对缺氧复氧损伤心肌细胞形态的影响 | 第75页 |
4.2.3.2 TTSMB 对缺氧复氧损伤心肌细胞存活率的影响 | 第75-76页 |
4.2.3.3 TTSMB 对缺氧复氧损伤心肌细胞培养液中心肌酶的影响 | 第76-77页 |
4.2.3.4 TTSMB 对缺氧复氧损伤心肌细胞培养液中SOD、MDA 的影响 | 第77页 |
4.2.3.5 TTSMB 对缺氧复氧损伤心肌细胞凋亡率的影响 | 第77-78页 |
4.2.3.6 TTSMB 对缺氧复氧损伤心肌细胞Caspase-3 的影响 | 第78-79页 |
4.2.4 小结 | 第79-80页 |
4.3 TTSMB 抗缺氧复氧损伤的机制研究 | 第80-90页 |
4.3.1 材料与方法 | 第80-81页 |
4.3.1.1 药物、试剂 | 第80页 |
4.3.1.2 动物 | 第80-81页 |
4.3.1.3 仪器 | 第81页 |
4.3.2 实验方法 | 第81-83页 |
4.3.2.1 乳鼠心肌细胞的培养 | 第81页 |
4.3.2.2 实验分组 | 第81页 |
4.3.2.3 MTT 法检测细胞存活率 | 第81-82页 |
4.3.2.4 培养液中生化指标测定 | 第82页 |
4.3.2.5 流式细胞术检测细胞凋亡 | 第82页 |
4.3.2.6 免疫组织化学检测ERK1/2 转位 | 第82页 |
4.3.2.7 激光共聚焦显微镜检测PKCε表达 | 第82-83页 |
4.3.2.8 Western blotting 检测细胞内PKCε、ERK1/2 表达 | 第83页 |
4.3.2.9 统计学分析 | 第83页 |
4.3.3 实验结果 | 第83-88页 |
4.3.3.1 TTSMB 对缺氧复氧损伤心肌细胞存活率的影响 | 第83-84页 |
4.3.3.2 TTSMB 对缺氧复氧损伤心肌细胞培养液中AST、MDA 的影响 | 第84-85页 |
4.3.3.3 TTSMB 对缺氧复氧损伤心肌细胞凋亡率的影响 | 第85-86页 |
4.3.3.4 TTSMB 对PKCε表达的影响 | 第86-87页 |
4.3.3.5 TTSMB 对ERK1/2 核转位的影响 | 第87-88页 |
4.3.3.6 Western blot 检测 PKCε和ERK1/2 表达 | 第88页 |
4.3.4 小结 | 第88-90页 |
第5章 讨论 | 第90-98页 |
第6章 结论 | 第98-99页 |
参考文献 | 第99-111页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第111-112页 |
致谢 | 第112页 |