中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
前言 | 第10-13页 |
材料与方法 | 第13-29页 |
1.实验材料 | 第13-18页 |
1.1 主要仪器 | 第13-14页 |
1.2 主要试剂 | 第14-15页 |
1.3 主要抗体 | 第15页 |
1.4 主要细胞株 | 第15页 |
1.5 试剂配制 | 第15-18页 |
2.实验方法 | 第18-28页 |
2.1 细胞的培养与传代 | 第18-19页 |
2.2 细胞的复苏与冻存 | 第19页 |
2.3 细胞的裂解 | 第19-20页 |
2.4 蛋白免疫印迹 | 第20-22页 |
2.5 细胞的核质分离 | 第22-23页 |
2.6 细胞凋亡检测 | 第23页 |
2.7 MTT法细胞活力检测 | 第23-24页 |
2.8 细胞转染 | 第24页 |
2.9 ELISA酶联免疫反应 | 第24-25页 |
2.10 PI与Hochest双染色法 | 第25-26页 |
2.11 线粒体的分离纯化 | 第26页 |
2.12 荧光定量PCR | 第26-27页 |
2.13 细胞周期检测 | 第27-28页 |
2.14 免疫荧光 | 第28页 |
3.数据统计 | 第28-29页 |
结果 | 第29-38页 |
3.1 去甲茴三硫能够抑制小胶质细胞过度激活 | 第29页 |
3.2 去甲茴三硫能够抑制过度激活的小胶质细胞合成及释放促炎性细胞因子 | 第29-32页 |
3.3 去甲茴三硫通过抑制NF-ΚB通路进而抑制P65的核转位现象 | 第32-34页 |
3.4 去甲茴三硫对多巴胺能神经元具有间接的保护作用 | 第34-35页 |
3.5 去甲茴三硫能够抑制多种肿瘤细胞的增殖 | 第35-38页 |
讨论 | 第38-40页 |
结论 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-45页 |
英文缩略词表 | 第45-46页 |
攻读学位期间公开发表的论文 | 第46-47页 |
致谢 | 第47-49页 |