| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-23页 |
| 1.1 研究背景 | 第14-15页 |
| 1.1.1 鼠尾草酸概述 | 第14-15页 |
| 1.1.2 鼠尾草酸的研究与应用是抗氧化剂的未来发展趋势 | 第15页 |
| 1.2 鼠尾草酸提取方法研究进展 | 第15-17页 |
| 1.2.1 有机溶剂提取法 | 第15-16页 |
| 1.2.2 超声提取法 | 第16-17页 |
| 1.2.3 匀浆提取法 | 第17页 |
| 1.2.4 超临界CO2萃取 | 第17页 |
| 1.3 鼠尾草酸的分离纯化方法研究进展 | 第17-18页 |
| 1.4 鼠尾草酸的抗氧化活性研究进展 | 第18-19页 |
| 1.5 鼠尾草酸的应用研究进展 | 第19-21页 |
| 1.5.1 食品工业 | 第20页 |
| 1.5.2 医药保健 | 第20-21页 |
| 1.5.3 日用化工 | 第21页 |
| 1.6 制约鼠尾草酸研究应用的主要问题 | 第21页 |
| 1.7 选题依据 | 第21-22页 |
| 1.8 本论文的主要研究内容 | 第22-23页 |
| 第二章 迷迭香中鼠尾草酸和迷迭香酸的含量检测 | 第23-29页 |
| 引言 | 第23页 |
| 2.1 实验仪器、试剂及材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第23页 |
| 2.1.2 试剂及材料 | 第23-24页 |
| 2.2 迷迭香鲜叶含水量的测定 | 第24页 |
| 2.3 迷迭香中脂溶性抗氧化成分的含量检测 | 第24-26页 |
| 2.3.1 HPLC色谱条件的建立 | 第24页 |
| 2.3.2 鼠尾草酸标准曲线的绘制 | 第24页 |
| 2.3.3 样品中鼠尾草酸的含量测定 | 第24-25页 |
| 2.3.4 重现性实验 | 第25页 |
| 2.3.5 加样回收率测定 | 第25-26页 |
| 2.4 迷迭香中水溶性抗氧化成分的含量测定 | 第26-28页 |
| 2.4.1 HPLC色谱条件的建立 | 第26页 |
| 2.4.2 迷迭香酸标准曲线的绘制 | 第26-27页 |
| 2.4.3 样品中迷迭香酸的含量测定 | 第27页 |
| 2.4.4 重现性实验 | 第27-28页 |
| 2.4.5 加样回收率测定 | 第28页 |
| 2.5 本章小结 | 第28-29页 |
| 第三章 鼠尾草酸提取工艺研究 | 第29-38页 |
| 引言 | 第29页 |
| 3.1 实验材料与设备 | 第29页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第29页 |
| 3.1.2 实验设备 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 3.2.1 水蒸气蒸馏法提取迷迭香精油 | 第29-30页 |
| 3.2.2 样品中鼠尾草酸含量的测定 | 第30页 |
| 3.2.3 正交法优化回流提取工艺 | 第30-31页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第31-36页 |
| 3.3.1 水蒸气蒸馏法提取迷迭香精油的结果分析 | 第31-32页 |
| 3.3.2 单因素对提取效果的影响 | 第32-34页 |
| 3.3.4 鼠尾草酸提取工艺技术路线 | 第34-35页 |
| 3.3.5 验证试验 | 第35-36页 |
| 3.4 本章小结 | 第36-38页 |
| 第四章 鼠尾草酸纯化工艺研究 | 第38-60页 |
| 引言 | 第38页 |
| 4.1 pH控制沉淀法初步纯化鼠尾草酸 | 第38-44页 |
| 4.1.1 实验材料与设备 | 第38-39页 |
| 4.1.1.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.1.1.2 实验设备 | 第38-39页 |
| 4.1.2 鼠尾草酸回收率及含量的确定 | 第39页 |
| 4.1.3 试验方法 | 第39-40页 |
| 4.1.3.1 鼠尾草酸质量浓度对萃取效果的因素试验 | 第39页 |
| 4.1.3.2 pH值对萃取效果的因素试验 | 第39-40页 |
| 4.1.3.3 萃取次数对萃取效果的因素试验 | 第40页 |
| 4.1.3.4 pH值对沉淀效果的因素试验 | 第40页 |
| 4.1.4 结果与讨论 | 第40-44页 |
| 4.1.4.1 鼠尾草酸质量浓度对萃取效果的影响 | 第40-41页 |
| 4.1.4.2 pH值对萃取效果的影响 | 第41页 |
| 4.1.4.3 萃取次数对萃取效果的影响 | 第41-42页 |
| 4.1.4.4 pH值对沉淀效果的影响 | 第42页 |
| 4.1.4.5 pH控制沉淀法纯化鼠尾草酸技术路线 | 第42-43页 |
| 4.1.4.6 pH控制沉淀法对鼠尾草酸的纯化效果 | 第43-44页 |
| 4.2 硅胶柱层析纯化鼠尾草酸 | 第44-53页 |
| 4.2.1 实验材料与设备 | 第44-45页 |
| 4.2.1.1 实验材料 | 第44页 |
| 4.2.1.2 实验设备 | 第44-45页 |
| 4.2.2 鼠尾草酸回收率及含量的确定 | 第45页 |
| 4.2.3 硅胶柱层析单因素实验 | 第45-46页 |
| 4.2.3.1 展开剂的选择 | 第45页 |
| 4.2.3.2 硅胶颗粒度的选择 | 第45页 |
| 4.2.3.3 洗脱剂比例的选择 | 第45-46页 |
| 4.2.3.4 洗脱剂流速的选择 | 第46页 |
| 4.2.3.5 负载量的选择 | 第46页 |
| 4.2.4 结果与分析 | 第46-53页 |
| 4.2.4.1 展开剂的选择 | 第46页 |
| 4.2.4.2 硅胶颗粒度的影响 | 第46-48页 |
| 4.2.4.3 洗脱剂比例的影响 | 第48-49页 |
| 4.2.4.4 洗脱流速的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.4.5 负载量的影响 | 第50-51页 |
| 4.2.4.6 硅胶柱层析纯化鼠尾草酸技术路线 | 第51-52页 |
| 4.2.4.7 HPLC测定鼠尾草酸的富集和纯化效果 | 第52-53页 |
| 4.3 鼠尾草酸的活性炭脱色工艺研究 | 第53-58页 |
| 4.3.1 实验材料与设备 | 第53-54页 |
| 4.3.1.1 实验材料 | 第53页 |
| 4.3.1.2 实验设备 | 第53-54页 |
| 4.3.2 脱色效果的检验方法 | 第54-55页 |
| 4.3.2.1 鼠尾草酸保留率的测定 | 第54页 |
| 4.3.2.2 鼠尾草酸脱色率 | 第54-55页 |
| 4.3.3 活性炭脱色因素试验 | 第55-56页 |
| 4.3.3.1 脱色温度的选择 | 第55页 |
| 4.3.3.2 活性炭用量的选择 | 第55页 |
| 4.3.3.3 脱色时间的选择 | 第55-56页 |
| 4.3.3.4 脱色溶液pH的选择 | 第56页 |
| 4.3.4 结果与分析 | 第56-58页 |
| 4.3.4.1 温度对脱色效果的影响 | 第56页 |
| 4.3.4.2 活性炭用量对脱色效果的影响 | 第56页 |
| 4.3.4.3 时间对脱色效果的影响 | 第56-57页 |
| 4.3.4.4 pH对脱色效果的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.4.5 脱色产品图 | 第58页 |
| 4.4 本章小结 | 第58-60页 |
| 第五章 鼠尾草酸在膏霜化妆品中的抗氧化效果研究 | 第60-67页 |
| 引言 | 第60页 |
| 5.1 实验仪器及材料 | 第60-61页 |
| 5.1.1 实验仪器 | 第60页 |
| 5.1.2 实验材料 | 第60-61页 |
| 5.2 膏霜化妆品的制备 | 第61页 |
| 5.3 化妆品溶液的配制 | 第61页 |
| 5.4 试验方法 | 第61-63页 |
| 5.4.1 清除ABTS自由基能力的测定 | 第61-62页 |
| 5.4.2 还原能力的测定 | 第62页 |
| 5.4.3 清除DPPH的能力测定 | 第62-63页 |
| 5.5 结果分析 | 第63-66页 |
| 5.5.1 清除ABTS自由基能力 | 第63-64页 |
| 5.5.2 铁还原能力 | 第64-65页 |
| 5.5.3 清除DPPH的测定 | 第65-66页 |
| 5.6 本章小结 | 第66-67页 |
| 结论与展望 | 第67-69页 |
| 一、结论 | 第67-68页 |
| 二、本论文创新点 | 第68页 |
| 三、展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第74-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 附件 | 第76页 |
