摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 绪论 | 第13-18页 |
1.1 菜籽粕的开发和应用研究现状 | 第13-14页 |
1.1.1 微生物发酵菜籽粕的研究现状 | 第13-14页 |
1.1.2 微生物发酵菜籽粕生产活性肽的研究现状 | 第14页 |
1.2 菜籽肽的功能性及其应用前景 | 第14-15页 |
1.3 发酵菜籽粕生产多肽领域存在的主要问题 | 第15-16页 |
1.4 本课题的研究意义与研究内容 | 第16-18页 |
1.4.1 研究目的意义 | 第16-17页 |
1.4.2 研究内容 | 第17-18页 |
第二章 固态发酵菜籽粕中抗氧化肽的分离纯化研究 | 第18-28页 |
2.1 前言 | 第18-19页 |
2.2 材料和仪器 | 第19页 |
2.2.1 材料和试剂 | 第19页 |
2.2.2 仪器和设备 | 第19页 |
2.3 试验方法 | 第19-22页 |
2.3.1 菜籽饼粕的预处理及固态发酵 | 第19页 |
2.3.2 固态发酵菜籽肽的理化性质测定 | 第19-20页 |
2.3.3 DPPH·清除能力测定 | 第20页 |
2.3.4 固态发酵菜籽肽的水提取工艺 | 第20页 |
2.3.5 固态发酵菜籽肽的超滤分离工艺 | 第20-21页 |
2.3.6 离子交换树脂分离RP_1 | 第21页 |
2.3.7 离子交换树脂-大孔吸附树脂串联脱盐 | 第21页 |
2.3.8 凝胶过滤色谱分离组分RP_1-E_2 | 第21-22页 |
2.3.9 氨基酸组成分析 | 第22页 |
2.3.10 统计分析 | 第22页 |
2.4 结果与分析 | 第22-27页 |
2.4.1 固态发酵菜籽粕的理化性质测定 | 第22页 |
2.4.2 超滤各组分的抗氧化率和回收率测定 | 第22-23页 |
2.4.3 离子交换色谱分离组分的抗氧化活性测定 | 第23-25页 |
2.4.4 凝胶过滤色谱分离RP_3-E_2 | 第25-26页 |
2.4.5 氨基酸分析 | 第26-27页 |
2.5 本章小结 | 第27-28页 |
第三章 发酵菜籽粕多肽体外模拟消化、吸收特性研究 | 第28-40页 |
3.1 前言 | 第28页 |
3.2 材料和仪器 | 第28-29页 |
3.2.1 材料和试剂 | 第28-29页 |
3.2.2 仪器和设备 | 第29页 |
3.3 试验方法 | 第29-33页 |
3.3.1 模拟胃肠消化条件 | 第29页 |
3.3.2 水解度测定 | 第29-30页 |
3.3.3 表面疏水性测定 | 第30页 |
3.3.4 DPPH·自由基清除能力测定 | 第30页 |
3.3.5 ·OH清除能力测定 | 第30页 |
3.3.6 还原力测定 | 第30-31页 |
3.3.7 离体外翻肠囊试验模型 | 第31-32页 |
3.3.8 离体外翻肠囊单因素试验 | 第32页 |
3.3.9 HPLC法测定肠吸收的菜籽肽分子量分布 | 第32-33页 |
3.3.10 统计分析 | 第33页 |
3.4 结果与分析 | 第33-39页 |
3.4.1 模拟消化对发酵菜籽多肽的水解度和表面疏水性的影响 | 第33页 |
3.4.2 发酵菜籽多肽的抗氧化活性 | 第33-34页 |
3.4.3 体外模拟消化对发酵菜籽肽分子量分布的影响 | 第34-35页 |
3.4.4 离体外翻肠囊单因素试验 | 第35-37页 |
3.4.5 离体外翻肠囊吸收菜籽肽的特性研究 | 第37-38页 |
3.4.6 不同时间小肠吸收菜籽肽的分子量分布 | 第38-39页 |
3.5 本章小结 | 第39-40页 |
第四章 RP_1改善小鼠记忆障碍作用的研究 | 第40-47页 |
4.1 前言 | 第40页 |
4.2 材料和仪器 | 第40-41页 |
4.2.1 材料和试剂 | 第40-41页 |
4.2.2 仪器和设备 | 第41页 |
4.3 试验方法 | 第41-42页 |
4.3.1 动物分组 | 第41页 |
4.3.2 动物模型 | 第41页 |
4.3.3 行为评估 | 第41-42页 |
4.3.4 分析样品采集和处理 | 第42页 |
4.3.5 脏器指数测定 | 第42页 |
4.3.6 生化分析 | 第42页 |
4.3.7 统计分析 | 第42页 |
4.4 结果与分析 | 第42-46页 |
4.4.1 RP_1对小鼠空间记忆缺陷的影响 | 第42-44页 |
4.4.2 RP_1对小鼠脏器指数的影响 | 第44-45页 |
4.4.3 RP_1对小鼠脑组织脂质过氧化水平的影响 | 第45页 |
4.4.4 RP_1对小鼠血清脂质过氧化水平的影响 | 第45-46页 |
4.5 本章小结 | 第46-47页 |
第五章 RP_1对大鼠红细胞脂质过氧化损伤的影响 | 第47-55页 |
5.1 前言 | 第47-48页 |
5.2 材料和仪器 | 第48页 |
5.2.1 材料和试剂 | 第48页 |
5.2.2 仪器和设备 | 第48页 |
5.3 试验方法 | 第48-50页 |
5.3.1 大鼠红细胞样品的获取 | 第48页 |
5.3.2 RP_1对大鼠红细胞氧化溶血的影响 | 第48-49页 |
5.3.3 RP_1对大鼠红细胞T-SOD、GSH-Px、ATP酶活和MDA含量的影响 | 第49页 |
5.3.4 RP_1 对血细胞高铁血红蛋白产生的影响 | 第49页 |
5.3.5 RP_1对大鼠红细胞膜表面巯基含量的影响 | 第49-50页 |
5.3.6 RP_1对大鼠红细胞膜总巯基含量的影响 | 第50页 |
5.3.7 统计处理 | 第50页 |
5.4 结果与分析 | 第50-53页 |
5.4.1 RP_1对大鼠红细胞氧化溶血的影响 | 第50-51页 |
5.4.2 RP_1对大鼠红细胞高铁血红蛋白产生的影响 | 第51-52页 |
5.4.3 RP_1对大鼠红细胞T-SOD、GSH-Px、ATP酶活和MDA含量的影响 | 第52-53页 |
5.4.4 RP_1对大鼠红细胞巯基含量的影响 | 第53页 |
5.5 本章小结 | 第53-55页 |
第六章 结论与展望 | 第55-57页 |
6.1 主要结论 | 第55-56页 |
6.2 论文创新点 | 第56页 |
6.3 展望 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-64页 |
附录 | 第64-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
攻读硕士期间发表的学术论文 | 第66页 |