| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-26页 |
| 1 现代分子检测技术 | 第13-15页 |
| 2 单片段代换系群体的应用 | 第15-19页 |
| 2.1 单片段代换系研究现状 | 第15-16页 |
| 2.2 单片段代换系的特点 | 第16页 |
| 2.3 SSSLs群体代换片段长度、位置的鉴定及遗传图谱的构建 | 第16-17页 |
| 2.4 运用SSSLs群体进行QTL鉴定 | 第17页 |
| 2.5 运用SSSLs群体进行QTL精细定位 | 第17-18页 |
| 2.6 运用SSSLs群体进行基因聚合 | 第18页 |
| 2.7 运用SSSLs群体进行杂种优势研究 | 第18-19页 |
| 3 水稻抽穗期研究进展 | 第19-26页 |
| 3.1 高等植物成花诱导途径 | 第19-21页 |
| 3.1.1 光周期 | 第19-20页 |
| 3.1.2 光周期诱导成花的分子机理 | 第20-21页 |
| 3.1.3 高等植物成花诱导的其它途径 | 第21页 |
| 3.2 水稻抽穗期研究进展 | 第21-26页 |
| 3.2.1 水稻感光性基因的定位 | 第21-22页 |
| 3.2.2 水稻基本营养生长期基因的定位 | 第22页 |
| 3.2.3 水稻抽穗期QTL的分析 | 第22-23页 |
| 3.2.4 水稻抽穗期基因的克隆 | 第23-24页 |
| 3.2.5 水稻抽穗的调控网络 | 第24-26页 |
| 第二章 材料方法 | 第26-32页 |
| 1 实验材料 | 第26页 |
| 2 实验方法 | 第26-32页 |
| 2.1 早熟基因定位 | 第26-28页 |
| 2.1.1 材料田间种植 | 第26页 |
| 2.1.2 性状调查 | 第26-27页 |
| 2.1.3 取样 | 第27页 |
| 2.1.4 DNA提取(CTAB法) | 第27页 |
| 2.1.5 PCR反应 | 第27-28页 |
| 2.2 杂种优势利用 | 第28-29页 |
| 2.2.1 材料田间种植 | 第28页 |
| 2.2.2 农艺性状的考察 | 第28页 |
| 2.2.3 数据整理与分析 | 第28-29页 |
| 2.3 抽穗期基因节律分析 | 第29-31页 |
| 2.3.1 材料处理 | 第29页 |
| 2.3.2 RNA提取 | 第29-30页 |
| 2.3.3 RNA的逆转录 | 第30-31页 |
| 2.3.4 qRT-PCR | 第31页 |
| 2.4 主要试剂 | 第31页 |
| 2.5 主要仪器设备 | 第31-32页 |
| 第三章 结果与分析 | 第32-54页 |
| 1 早抽穗单片段代换系SSSL4-6农艺性状分析 | 第32-37页 |
| 1.1 SSSL4-6遗传背景分析 | 第32页 |
| 1.2 SSSL4-6抽穗期分析 | 第32-33页 |
| 1.3 SSSL4-6其他主要农艺性状分析 | 第33-37页 |
| 2 控制SSSL4-6早熟性状基因的遗传分析与定位 | 第37-40页 |
| 2.1 遗传分析 | 第37-38页 |
| 2.2 早熟基因的定位 | 第38-39页 |
| 2.3 SSSL4-6的Ghd7序列比对 | 第39-40页 |
| 3 Ghd7与LOC_07g15640的qRT-PCR表达分析 | 第40-43页 |
| 3.1 Ghd7的qRT-PCR表达分析 | 第40-41页 |
| 3.2 LOC_Os07g15640的qRT-PCR表达分析 | 第41-43页 |
| 4 EH7在杂种优势利用中的表现与评价 | 第43页 |
| 5 EH7与Hd1、Ghd8的相互作用 | 第43-54页 |
| 5.1 EH7与Hd1的相互作用 | 第45-48页 |
| 5.1.1 EH7与Hd1聚合体的抽穗期分析 | 第45-46页 |
| 5.1.2 EH7与Hd1聚合体qRT-PCR表达分析 | 第46-48页 |
| 5.2 EH7与Ghd8的相互作用 | 第48-50页 |
| 5.3 EH7、Hd1和Ghd8三个基因间的相互作用 | 第50-54页 |
| 第四章 讨论 | 第54-57页 |
| 1 EH7与Ghd7的比较 | 第54-55页 |
| 1.1 EH7与Ghd7的表型比较 | 第54页 |
| 1.2 SSSL4-6中Ghd7等位基因序列比对 | 第54-55页 |
| 2 EH7可较好地运用于水稻育种 | 第55页 |
| 3 EH7、Hd1与Ghd8参与开花途径的模式 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
