| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 常用词缩写 | 第9-12页 |
| 前言 | 第12页 |
| 1 文献综述 | 第12-21页 |
| 1.1 RRM型RNA结合蛋白的研究进展 | 第12-15页 |
| 1.1.1 RRM结构域的结构组成 | 第12-13页 |
| 1.1.2 RRM结构域与RNA的结合模式 | 第13页 |
| 1.1.3 RRM型RNA结合蛋白的功能 | 第13-15页 |
| 1.2 RNA结合蛋白Rbm24和Rbm38研究进展 | 第15-20页 |
| 1.2.1 Rbm24和Rbm38对骨骼肌发育的调控作用 | 第16-18页 |
| 1.2.2 Rbm24和Rbm38与肿瘤抑制因子间的相互作用 | 第18-20页 |
| 1.3 研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-34页 |
| 2.1 试验材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 试验样品 | 第21页 |
| 2.1.2 药品和试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要试验仪器 | 第22页 |
| 2.1.4 所用试剂的配制 | 第22-23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-34页 |
| 2.2.1 引物的设计与合成 | 第23-24页 |
| 2.2.2 总RNA的提取及质量检测 | 第24-26页 |
| 2.2.3 cDNA的合成 | 第26-27页 |
| 2.2.4 目的片段的获得与纯化 | 第27-28页 |
| 2.2.5 基因克隆与鉴定 | 第28页 |
| 2.2.6 基因序列比较与分析 | 第28-29页 |
| 2.2.7 鸭MyoD基因真核表达载体的构建及酶切鉴定 | 第29-30页 |
| 2.2.8 成肌细胞培养 | 第30-32页 |
| 2.2.9 pEGFP-N1-MyoD重组质粒转染成肌细胞 | 第32页 |
| 2.2.10 成肌细胞RNA的提取及反转录 | 第32-33页 |
| 2.2.11 实时荧光定量PCR | 第33-34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-48页 |
| 3.1 鸭Rbm24与Rbm38基因克隆和序列分析 | 第34-42页 |
| 3.1.1 鸭Rbm24与Rbm38基因克隆 | 第34页 |
| 3.1.2 鸭Rbm24与Rbm38基因测序结果及氨基酸序列预测 | 第34-36页 |
| 3.1.3 鸭Rbm24与Rbm38基因编码区核苷酸和氨基酸序列同源性分析 | 第36-37页 |
| 3.1.4 鸭Rbm24与Rbm38基因的分子进化分析 | 第37-38页 |
| 3.1.5 鸭Rbm24与Rbm38基因的结构功能域分析 | 第38-41页 |
| 3.1.6 鸭Rbm24与Rbm38在鸭骨骼肌中的差异性表达 | 第41-42页 |
| 3.2 鸭pEGFP-N1-MyoD真核表达载体构建及其转染检测 | 第42-48页 |
| 3.2.1 鸭MyoD全长cDNA的获得 | 第42-43页 |
| 3.2.2 鸭PMD19-T-MyoD、pEGFP-N1-MyoD载体的构建及双酶切鉴定 | 第43-44页 |
| 3.2.3 鸭pEGFP-N1-MyoD真核表达载体构转染效率检测 | 第44-46页 |
| 3.2.4 过表达MyoD基因对其下游基因的作用 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-53页 |
| 4.1 鸭Rbm24与Rbm38基因的变异特征 | 第48页 |
| 4.2 鸭Rbm24与Rbm38基因的结构域分析 | 第48-49页 |
| 4.3 鸭Rbm24与Rbm38基因在腿肌和胸肌中的表达特性 | 第49-50页 |
| 4.4 过表达鸭MyoD基因对Rbm24与Rbm38基因表达的影响 | 第50-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 硕士研究生学习期间发表文章 | 第59页 |
