| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 英文缩写索引 | 第8-10页 |
| 1 绪论 | 第10-18页 |
| 1.1 研究背景 | 第10-11页 |
| 1.2 Txnip的研究进展 | 第11-15页 |
| 1.2.1 Txnip的结构与功能 | 第11页 |
| 1.2.2 Txnip基因的表达调控 | 第11-12页 |
| 1.2.3 Txnip与2型糖尿病 | 第12-14页 |
| 1.2.4 以Txnip为作用靶点的2型糖尿病药物 | 第14-15页 |
| 1.3 京尼平苷的药理学研究进展 | 第15-16页 |
| 1.3.1 抗氧化作用 | 第15页 |
| 1.3.2 抗肿瘤作用 | 第15-16页 |
| 1.3.3 神经保护作用 | 第16页 |
| 1.3.4 对于糖尿病的防治作用 | 第16页 |
| 1.4 本文立论依据前期工作基础 | 第16-18页 |
| 2 京尼平苷调节Txnip降解影响GSIS的分子机制 | 第18-38页 |
| 2.1 前言 | 第18-19页 |
| 2.2 实验材料及仪器 | 第19-21页 |
| 2.2.1 实验细胞株 | 第19页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第19页 |
| 2.2.3 主要溶液 | 第19-20页 |
| 2.2.4 主要仪器 | 第20-21页 |
| 2.3 实验方法 | 第21-27页 |
| 2.3.1 大鼠胰腺INS-1 细胞的培养 | 第21页 |
| 2.3.2 蛋白浓度的测定 | 第21-22页 |
| 2.3.3 Western blot分析 | 第22-24页 |
| 2.3.4 胰岛素检测 | 第24-25页 |
| 2.3.5 葡萄糖吸收的测定 | 第25-26页 |
| 2.3.6 ATP的检测 | 第26-27页 |
| 2.3.7 Txnip干扰的实验步骤 | 第27页 |
| 2.3.8 统计分析 | 第27页 |
| 2.4 实验结果 | 第27-35页 |
| 2.4.1 在高糖条件下，京尼平苷对Txnip蛋白水平的影响 | 第27-29页 |
| 2.4.2 MG132和Leupeptin对京尼平苷调节Txnip降解的影响 | 第29-31页 |
| 2.4.3 MG132对京尼平苷调节糖吸收、代谢以及GSIS的影响 | 第31-33页 |
| 2.4.4 Txnip干扰对京尼平苷调节胰腺β细胞糖吸收代谢以及GSIS的影响 | 第33-35页 |
| 2.5 讨论 | 第35-37页 |
| 2.6 小结 | 第37-38页 |
| 3 结论与展望 | 第38-40页 |
| 3.1 结论 | 第38页 |
| 3.2 展望 | 第38-40页 |
| 致谢 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-48页 |
| 在校期间发表的学术论文及研究成果 | 第48-49页 |
