| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 第一部分 麻疯树胚胎发育晚期富集蛋白基因(JcLEA)的功能分析 | 第13-60页 |
| 第一章 植物LEA基因的研究进展 | 第13-20页 |
| 1.1 植物的抗旱及抗盐机制 | 第13-15页 |
| 1.1.1 植物的抗旱机制 | 第13-14页 |
| 1.1.2 植物的抗盐机制 | 第14-15页 |
| 1.2 植物LEA蛋白的研究进展 | 第15-17页 |
| 1.2.1 植物LEA蛋白概述 | 第15-16页 |
| 1.2.2 植物LEA蛋白的分类研究 | 第16页 |
| 1.2.3 植物LEA蛋白功能研究概况 | 第16-17页 |
| 1.3 麻疯树的研究概况 | 第17-20页 |
| 1.3.1 麻疯树概述 | 第17-18页 |
| 1.3.2 麻疯树的干旱抗性 | 第18-20页 |
| 第二章 麻疯树LEA蛋白的功能研究 | 第20-51页 |
| 引言 | 第20页 |
| 2.1 实验材料与试剂 | 第20-24页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.2 菌株和载体 | 第21页 |
| 2.1.3 仪器和设备 | 第21-22页 |
| 2.1.4 试剂和试剂盒 | 第22-24页 |
| 2.1.4.1 试剂盒 | 第22页 |
| 2.1.4.2 主要的试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.4.3 引物 | 第23-24页 |
| 2.1.4.4 培养基 | 第24页 |
| 2.1.4.5 用于植物培养的土壤 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-37页 |
| 2.2.1 JcLEA蛋白进化树构建方法 | 第24-25页 |
| 2.2.2 JcLEA蛋白的亚细胞定位分析方法 | 第25-30页 |
| 2.2.2.1 烟草的种植 | 第25页 |
| 2.2.2.2 烟草转化载体CaMV35S::JcLEA::GFP的构建 | 第25-30页 |
| 2.2.2.3 烟草转化 | 第30页 |
| 2.2.2.4 激光共聚焦荧光显微镜检测GFP蛋白的亚细胞定位 | 第30页 |
| 2.2.3 JcLEA基因在胁迫处理下表达特性的分析方法 | 第30-33页 |
| 2.2.3.1 麻疯树种植 | 第30页 |
| 2.2.3.2 麻疯树树苗的胁迫处理 | 第30-31页 |
| 2.2.3.3 麻疯树总RNA的抽提 | 第31-32页 |
| 2.2.3.4 realtime PCR | 第32-33页 |
| 2.2.4 JcLEA在转基因拟南芥中的功能分析方法 | 第33-37页 |
| 2.2.4.1 拟南芥的种植 | 第33页 |
| 2.2.4.2 转基因株系筛选与鉴定 | 第33页 |
| 2.2.4.3 不同株系中JcLEA基因表达量的测定 | 第33-34页 |
| 2.2.4.4 培养基中转基因株系与野生型拟南芥的盐胁迫与干旱胁迫处理 | 第34-35页 |
| 2.2.4.5 土中生长的转基因株系与野生型拟南芥的盐胁迫与干旱胁迫处理 | 第35页 |
| 2.2.4.6 培养基中与土中胁迫处理后的株系的形态观察与存活率统计 | 第35页 |
| 2.2.4.7 土中胁迫处理后的转基因株系以及野生型的生理指标定的测定 | 第35-37页 |
| 2.3 实验结果和讨论 | 第37-51页 |
| 2.3.1 LEA蛋白进化树分析 | 第37页 |
| 2.3.2 JcLEA蛋白在烟草细胞中亚细胞定位 | 第37-39页 |
| 2.3.3 麻疯树中JcLEA基因在受多种胁迫诱导时的表达 | 第39-40页 |
| 2.3.4 麻疯树JcLEA基因抗旱与抗盐功能分析 | 第40-51页 |
| 2.3.4.1 转基因株系的获得 | 第40-41页 |
| 2.3.4.2 不同line中JcLEA基因表达量的测定 | 第41页 |
| 2.3.4.3 转JcLEA拟南芥抗旱性分析 | 第41-46页 |
| 2.3.4.4 转JcLEA拟南芥抗盐性分析 | 第46-51页 |
| 第三章 总结与展望 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 第二部分 AtMSH6和AtMSH7在减数分裂重组中的功能分析 | 第60-88页 |
| 第一章 植物MSH6和MSH7研究进展 | 第60-65页 |
| 1.1 减数分裂重组的相关研究 | 第60-62页 |
| 1.2 MSH错配修复系统 | 第62-63页 |
| 1.3 MSH6和MSH7的功能研究 | 第63-65页 |
| 第二章 拟南芥MSH6与MSH7在减数分裂重组中的作用分析 | 第65-83页 |
| 引言 | 第65页 |
| 2.1 实验材料和试剂 | 第65-66页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第65页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第65-66页 |
| 2.2 实验方法 | 第66-69页 |
| 2.2.1 拟南芥的种植 | 第66页 |
| 2.2.2 单突变体的鉴定以及MSH6和MSH7的结构域 | 第66-68页 |
| 2.2.3 野生型中AtMSH6与AtMSH7的组织表达特性 | 第68页 |
| 2.2.4 msh6和msh7-1突变体中MSH家族基因表达量的测定 | 第68页 |
| 2.2.5 msh6和msh7-1单突变体及植株表型分析 | 第68-69页 |
| 2.2.6 拟南芥杂交 | 第69页 |
| 2.2.7 重组率的分析 | 第69页 |
| 2.3 实验结果和讨论 | 第69-83页 |
| 2.3.1 MSH6与MSH7的结构域分析 | 第69-70页 |
| 2.3.2 AtMSH6/7/4/5 MutSac结构域的比对 | 第70-71页 |
| 2.3.3 msh6和msh7-1突变体植株的获得 | 第71-74页 |
| 2.3.3.1 msh6突变体的获得与鉴定 | 第71-73页 |
| 2.3.3.2 msh7-1及msh7-2突变体的获得与鉴定 | 第73-74页 |
| 2.3.4 AtMSH6和AtMSH7的组织表达特性 | 第74-75页 |
| 2.3.4.1 AtMSH6的组织表达特性 | 第74-75页 |
| 2.3.4.2 AtMSH7的组织表达特性 | 第75页 |
| 2.3.5 msh6和msh7-1突变体中MSH家族基因表达 | 第75-76页 |
| 2.3.6 msh6和msh7-1突变体植株的表型 | 第76-77页 |
| 2.3.6.1 msh6突变体植株的表型 | 第77页 |
| 2.3.6.2 msh7-1突变体植株的表型 | 第77页 |
| 2.3.7 msh6msh7-1双突变体的表型 | 第77-78页 |
| 2.3.8 研究msh6与msh7-1单突变对重组率影响 | 第78-80页 |
| 2.3.8.1 材料构建 | 第78-79页 |
| 2.3.8.2 msh6突变体与野生型的重组率分析 | 第79-80页 |
| 2.3.8.3 msh7-1突变体与野生型的重组率分析 | 第80页 |
| 2.3.9 进一步研究AtMSH6与AtMSH7构建的材料 | 第80-83页 |
| 2.3.9.1 研究AtMSH6和AtMSH7与MSH家族其它成员关系的构建 | 第80-81页 |
| 2.3.9.2 研究AtASH6与AtMSH7在减数分裂重组模型中作用位置的构建 | 第81-82页 |
| 2.3.9.3 研究多突变体对减数分裂重组率影响的构建 | 第82-83页 |
| 第三章 总结和展望 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-88页 |
| 致谢 | 第88-90页 |
