摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-33页 |
1.1 L-半胱氨酸概述 | 第11-15页 |
1.1.1 Cys的重要作用 | 第11-14页 |
1.1.1.1 扩大蛋白质功能多样性 | 第11-12页 |
1.1.1.2 生物催化 | 第12-13页 |
1.1.1.3 药物作用 | 第13页 |
1.1.1.4 食品工业等其它领域 | 第13-14页 |
1.1.2 Cys的危害 | 第14-15页 |
1.1.2.1 神经毒性 | 第14页 |
1.1.2.2 致癌作用 | 第14-15页 |
1.2 L-半胱氨酸的检测方法 | 第15-22页 |
1.2.1 高效液相色谱法 | 第15-16页 |
1.2.2 电化学方法 | 第16-17页 |
1.2.3 质谱法 | 第17-18页 |
1.2.4 毛细管电泳法 | 第18页 |
1.2.5 流动注射分析法 | 第18-19页 |
1.2.6 紫外比色化学传感器 | 第19-21页 |
1.2.7 分子荧光光谱法 | 第21-22页 |
1.3 L-半胱氨酸荧光化学传感器的研究进展 | 第22-32页 |
1.3.1 香豆素类 | 第22-24页 |
1.3.2 罗丹明、荧光素类 | 第24-25页 |
1.3.3 BODIPY类 | 第25-27页 |
1.3.4 方酸类 | 第27-28页 |
1.3.5 花青染料类 | 第28-30页 |
1.3.6 萘类衍生物 | 第30页 |
1.3.7 纳米材料类 | 第30-31页 |
1.3.8 量子点 | 第31-32页 |
1.4 本论文主要研究内容 | 第32-33页 |
第2章 L-半胱氨酸荧光化学传感器配体及中间产物的合成与表征 | 第33-41页 |
2.1 前言 | 第33-34页 |
2.2 实验部分 | 第34-40页 |
2.2.1 实验药品(用品)及试剂 | 第34页 |
2.2.2 实验仪器设备 | 第34-35页 |
2.2.3 中间产物1的合成及表征 | 第35-37页 |
2.2.3.1 中间产物1的合成 | 第35-36页 |
2.2.3.2 中间产物1的表征 | 第36-37页 |
2.2.4 化合物L的合成与表征 | 第37-40页 |
2.2.4.1 化合物L的合成 | 第37-38页 |
2.2.4.2 化合物L的表征 | 第38-40页 |
2.3 本章小结 | 第40-41页 |
第3章 L-半胱氨酸荧光化学传感器的光谱性质及应用 | 第41-61页 |
3.1 实验部分 | 第41-59页 |
3.1.1 实验仪器设备 | 第41页 |
3.1.2 实验药品及试剂 | 第41-43页 |
3.1.3 实验过程与结果讨论 | 第43-59页 |
3.1.3.1 L, L-Cu~(2+), L-Cu~(2+)-Cys的光谱性质 | 第43-44页 |
3.1.3.2 等摩尔连续变化法测定化合物L与Cu~(2+)络合比 | 第44-45页 |
3.1.3.3 加入Cu~(2+)的量的研究 | 第45-46页 |
3.1.3.4 实验条件的优化 | 第46-52页 |
3.1.3.4.1 溶剂对体系荧光响应的影响 | 第46-47页 |
3.1.3.4.2 乙腈含量对体系荧光响应的影响 | 第47-48页 |
3.1.3.4.3 p H对体系荧光响应的影响 | 第48-49页 |
3.1.3.4.4 缓冲溶液对体系荧光响应的影响 | 第49-50页 |
3.1.3.4.5 反应时间对体系荧光响应的影响 | 第50-51页 |
3.1.3.4.6 温度对体系荧光响应的影响 | 第51-52页 |
3.1.3.5 传感器L-Cu~(2+)的选择性研究 | 第52-54页 |
3.1.3.6 传感器L-Cu~(2+)的抗干扰性研究 | 第54-55页 |
3.1.3.7 L-Cu~(2+)对Cys的响应实验 | 第55-57页 |
3.1.3.8 L-Cu~(2+)对Cys的荧光响应传感机理 | 第57-59页 |
3.2 实际样品的测定 | 第59-60页 |
3.3 本章小结 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-69页 |
作者简介及攻读硕士期间发表的文章 | 第69-70页 |
致谢 | 第70页 |