| 缩略语表 | 第5-8页 |
| 中文摘要 | 第8-13页 |
| ABSTRACT | 第13-17页 |
| 前言 | 第18-19页 |
| 文献回顾 | 第19-41页 |
| 1 视网膜色素变性 | 第19-34页 |
| 2 氢分子医学 | 第34-41页 |
| 实验一 MNU诱导RP大鼠视网膜时空特点的评估 | 第41-67页 |
| 1 材料 | 第42-44页 |
| 1.1 实验动物 | 第42页 |
| 1.2 主要试剂 | 第42-43页 |
| 1.3 主要仪器 | 第43-44页 |
| 2 方法 | 第44-52页 |
| 2.1 实验动物分组及MNU诱导RP大鼠模型的建立 | 第44-45页 |
| 2.2 ERG记录 | 第45页 |
| 2.3 MEA记录及数据处理 | 第45-46页 |
| 2.4 大鼠眼球光学相干断层扫描（optical coherence tomography，OCT）检测 | 第46页 |
| 2.5 视网膜石蜡切片HE染色 | 第46-47页 |
| 2.6 视网膜铺片免疫荧光染色 | 第47-49页 |
| 2.7 蛋白印迹（Western blotting） | 第49-50页 |
| 2.8 定量反转录聚合酶链反应（quantitative reverse transcriptionpolymerase chainreaction，qRT-PCR） | 第50-52页 |
| 2.9 统计分析方法 | 第52页 |
| 3 结果 | 第52-63页 |
| 3.1 实验动物存活情况 | 第52页 |
| 3.2 MNU诱导RP大鼠视网膜功能时空特点 | 第52-56页 |
| 3.3 MNU诱导RP大鼠视网膜形态时空特点 | 第56-61页 |
| 3.4 MNU诱导RP大鼠视网膜调亡相关基因表达水平改变的时空特点 | 第61-63页 |
| 4 讨论 | 第63-67页 |
| 实验二 氢饱和生理盐水对MNU诱导RP大鼠视网膜的保护作用研究 | 第67-88页 |
| 1 材料 | 第67-69页 |
| 1.1 实验动物 | 第67-68页 |
| 1.2 主要试剂 | 第68-69页 |
| 1.3 主要仪器 | 第69页 |
| 2 方法 | 第69-73页 |
| 2.1 实验动物分组 | 第69页 |
| 2.2 HRS的制备及干预 | 第69-70页 |
| 2.3 全视野ERG记录 | 第70页 |
| 2.4 MEA记录与分析 | 第70页 |
| 2.5 视网膜石蜡切片HE染色 | 第70页 |
| 2.6 视网膜石蜡切片TUN EL染色 | 第70-71页 |
| 2.7 视网膜总超氧化物歧化酶（T-SOD）活性和丙二醛（MDA）含量检测 | 第71-73页 |
| 2.8 反转录 PCR | 第73页 |
| 2.9 统计分析方法 | 第73页 |
| 3. 结果 | 第73-83页 |
| 3.1 实验动物存活情况 | 第73页 |
| 3.2 HRS对MN U诱导RP大鼠外层视网膜功能的影响 | 第73-76页 |
| 3.3 HRS对MN U诱导RP大鼠内层视网膜功能的影响 | 第76-79页 |
| 3.4 HRS对MN U诱导RP大鼠视网膜形态学影响 | 第79页 |
| 3.5 HRS对MN U诱导RP大鼠视网膜凋亡相关基因表达水平的影响 | 第79-83页 |
| 3.6 HRS对MN U诱导RP大鼠视网膜氧化应激水平的影响 | 第83页 |
| 4 讨论 | 第83-88页 |
| 小结 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-105页 |
| 个人简历和研究成果 | 第105-107页 |
| 致谢 | 第107页 |
