| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| Abbreviations | 第10-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-20页 |
| 一、肝星状细胞的激活 | 第13-15页 |
| 二、肝星状细胞激活中的信号通路与炎症反应 | 第15-18页 |
| 三、P2x7R在酒精性肝病的作用 | 第18-20页 |
| 第二章. 材料与方法 | 第20-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.1.2 实验试剂与仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-28页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第22页 |
| 2.2.2 细胞处理方法 | 第22-23页 |
| 2.2.3 酶联免疫吸附测定 | 第23页 |
| 2.2.4 含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶活性测定 | 第23页 |
| 2.2.5 总RNA的提取和逆转录 | 第23-24页 |
| 2.2.6 细胞提取与蛋白印迹分析 | 第24页 |
| 2.2.7 免疫化学分析 | 第24页 |
| 2.2.8 小RNA干扰实验 | 第24-25页 |
| 2.2.9 小鼠TAA所致肝纤维化模型建立 | 第25页 |
| 2.2.10 小鼠慢性酒精加急性酒精灌胃模型建立(chronic-binge model)2.2.11 动物肝脏切片的制作与染色 | 第25页 |
| 2.2.11 动物肝脏切片的制作与染色 | 第25-26页 |
| 2.2.12 蛋白印迹检测相关蛋白 | 第26-27页 |
| 2.2.12.1 总蛋白提取 | 第26页 |
| 2.2.12.2 蛋白浓度的测定 | 第26-27页 |
| 2.2.12.3 蛋白印迹分析 | 第27页 |
| 2.2.13 数据处理 | 第27-28页 |
| 第三章 实验结果 | 第28-47页 |
| 3.1 LPS刺激的条件培养基对肝星状细胞活化作用 | 第28-30页 |
| 3.2 P2x7R参与肝星状细胞激活 | 第30-32页 |
| 3.3 A438079抑制LX2细胞胶原的合成与沉积 | 第32-35页 |
| 3.4 沉默P2x7R基因可阻断LX2细胞激活与炎性应答 | 第35-37页 |
| 3.5 P2x7R选择性拮抗剂A438079调控TAA所致小鼠炎性因子与肝纤维化指标 | 第37-41页 |
| 3.6 酒精对AML12细胞中炎症小体及脂肪代谢因子的影响 | 第41-44页 |
| 3.7 P2x7R拮抗剂A438079对酒精所致小鼠肝脏脂肪蓄积的作用 | 第44-47页 |
| 第四章 讨论 | 第47-52页 |
| 第五章 结论 | 第52-53页 |
| REFERENCES | 第53-60页 |
| 谢辞 | 第60-61页 |
| 博士在读期间获得成果 | 第61-62页 |
