| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 符号表 | 第8-13页 |
| 第1章 文献综述 | 第13-23页 |
| 1.1 NLRP3炎性体概述 | 第13-14页 |
| 1.1.1 NLRP3炎性体的结构 | 第13页 |
| 1.1.2 NLRP3炎性体的分布 | 第13页 |
| 1.1.3 NLRP3炎性体的功能 | 第13-14页 |
| 1.2 NLRP3炎性体的活化机制 | 第14-16页 |
| 1.2.1 K~+通道模型 | 第14-15页 |
| 1.2.2 溶酶体破坏模型 | 第15-16页 |
| 1.2.3 ROS模型 | 第16页 |
| 1.3 NLRP3炎性体与肾脏相关疾病的关系 | 第16-18页 |
| 1.3.1 NLRP3与急性肾损伤 | 第16-17页 |
| 1.3.2 NLRP3与慢性肾损伤 | 第17-18页 |
| 1.3.3 NLRP3与结晶相关肾损伤 | 第18页 |
| 1.4 多巴胺概述 | 第18-20页 |
| 1.4.1 多巴胺的化学特性 | 第18-19页 |
| 1.4.2 多巴胺的药理作用 | 第19页 |
| 1.4.3 多巴胺受体 | 第19-20页 |
| 1.4.4 多巴胺与疾病治疗 | 第20页 |
| 1.5 高血压国内外的研究进展 | 第20-22页 |
| 1.5.1 高血压的流行性调查 | 第20-21页 |
| 1.5.2 高血压发病机制 | 第21页 |
| 1.5.3 高血压的传统药物治疗 | 第21-22页 |
| 1.6 小结 | 第22-23页 |
| 第2章 孕期LPS刺激致子代大鼠高血压模型的建立 | 第23-31页 |
| 2.1 材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 试验动物 | 第23-24页 |
| 2.1.2 动物饲料 | 第24页 |
| 2.1.3 试验药物 | 第24页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第24页 |
| 2.2 方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 模型的建立 | 第24页 |
| 2.2.2 子代大鼠采食量及体重的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.3 子代大鼠血压的测定 | 第25页 |
| 2.2.4 数据分析 | 第25页 |
| 2.3 结果 | 第25-29页 |
| 2.3.1 孕期LPS刺激及DA干预对子代大鼠高血压的影响 | 第25页 |
| 2.3.2 孕期LPS刺激及DA干预对子代大鼠体重的影响 | 第25-28页 |
| 2.3.3 孕期LPS刺激及DA干预对子代大鼠采食量的影响 | 第28-29页 |
| 2.4 讨论 | 第29-31页 |
| 第3章 孕期LPS刺激及DA干预对子代大鼠肾功能及肾脏形态学的影响 | 第31-41页 |
| 3.1 材料 | 第31-33页 |
| 3.1.1 试验动物 | 第31页 |
| 3.1.2 动物饲料 | 第31页 |
| 3.1.3 试验药物 | 第31页 |
| 3.1.4 主要试剂 | 第31-32页 |
| 3.1.5 主要仪器 | 第32页 |
| 3.1.6 试剂配制 | 第32-33页 |
| 3.2 方法 | 第33-36页 |
| 3.2.1 模型的建立 | 第33页 |
| 3.2.2 血液的收集及肾功能指标的测定 | 第33页 |
| 3.2.3 酶联免疫法（ELISA）测定血清中的IL-1β和IL-18 | 第33-34页 |
| 3.2.4 动物组织病理切片的制作 | 第34-35页 |
| 3.2.5 HE染色 | 第35-36页 |
| 3.2.6 数据分析 | 第36页 |
| 3.3 结果 | 第36-38页 |
| 3.3.1 肾功能测定结果 | 第36-37页 |
| 3.3.2 IL-1β和IL-18测定结果 | 第37页 |
| 3.3.3 HE染色结果 | 第37-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38-41页 |
| 第4章 孕期LPS刺激及DA干预对子代大鼠肾脏NLRP3炎性体mRNA表达的影响 | 第41-51页 |
| 4.1 材料 | 第41-42页 |
| 4.1.1 试验动物 | 第41-42页 |
| 4.1.2 动物饲料 | 第42页 |
| 4.1.3 试验药物 | 第42页 |
| 4.1.4 实验准备 | 第42页 |
| 4.2 方法 | 第42-46页 |
| 4.2.1 总RNA的提取与鉴定 | 第42-43页 |
| 4.2.2 反转录反应 | 第43页 |
| 4.2.3 引物设计 | 第43-44页 |
| 4.2.4 配制反应体系 | 第44页 |
| 4.2.5 产物完整性的鉴定 | 第44-45页 |
| 4.2.6 Real-time PCR反应 | 第45-46页 |
| 4.2.7 结果计算 | 第46页 |
| 4.2.8 数据分析 | 第46页 |
| 4.3 结果 | 第46-48页 |
| 4.3.1 PCR产物电泳结果 | 第46页 |
| 4.3.2 NLRP3、ASC和CASP1基因表达的定量分析 | 第46-48页 |
| 4.4 讨论 | 第48-51页 |
| 第5章 孕期LPS刺激及DA干预对子代大鼠肾脏中NLRP3炎性体蛋白表达的影响 | 第51-67页 |
| 5.1 材料 | 第52-54页 |
| 5.1.1 试验动物 | 第52页 |
| 5.1.2 动物饲料 | 第52页 |
| 5.1.3 试验药物 | 第52页 |
| 5.1.4 实验器材 | 第52页 |
| 5.1.5 免疫组化染色试剂配制 | 第52-53页 |
| 5.1.6 Western blot主要试剂 | 第53-54页 |
| 5.2 方法 | 第54-58页 |
| 5.2.1 免疫组织化学染色 | 第54-56页 |
| 5.2.2 图像分析 | 第56页 |
| 5.2.3 Western blot实验步骤 | 第56-58页 |
| 5.2.4 数据分析 | 第58页 |
| 5.3 结果 | 第58-63页 |
| 5.3.1 免疫组织化学技术检测子代大鼠肾脏组织的NLRP3定位分布及表达 | 第58-59页 |
| 5.3.2 免疫组织化学技术检测子代大鼠肾脏组织的ASC定位分布及表达 | 第59-60页 |
| 5.3.3 免疫组织化学技术检测子代大鼠肾脏组织的CASP1定位分布及表达 | 第60-61页 |
| 5.3.4 Western blot对免疫组织化学染色的结果验证 | 第61-63页 |
| 5.4 讨论 | 第63-67页 |
| 第6章 结论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-79页 |
| 缩略语词汇表 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第82页 |
