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异源表达L-氨基酸脱氨酶全细胞转化L-异亮氨酸生产α-酮-β-甲基正戊酸

摘要第3-4页
Abstract第4-5页
第一章 绪论第9-15页
    1.1 α-酮-β-甲基正戊酸概述第9-10页
        1.1.1 α-酮-β-甲基正戊酸的应用价值第9页
        1.1.2 α-酮-β-甲基正戊酸的合成方法第9-10页
    1.2 L-氨基酸氧化酶和L-氨基酸脱氨酶研究概述第10-12页
        1.2.1 L-氨基酸氧化酶和L-氨基酸脱氨酶的生物活性第10-11页
        1.2.2 L-氨基酸氧化酶和L-氨基酸脱氨酶蛋白晶体结构研究进展第11-12页
    1.3 L-氨基酸脱氨酶的特点第12-13页
        1.3.1 L-氨基酸脱氨酶催化L-氨基酸反应不产生过氧化氢第12页
        1.3.2 多数L-氨基酸脱氨酶定位在细胞膜上第12页
        1.3.3 L-氨基酸脱氨酶可以在大肠杆菌中活性表达第12-13页
    1.4 L-氨基酸脱氨酶活性检测第13页
    1.5 立题依据以及研究意义第13-14页
    1.6 研究内容第14-15页
第二章 材料与方法第15-25页
    2.1 材料第15-17页
        2.1.1 菌株与质粒第15-16页
        2.1.2 主要试剂第16页
        2.1.3 主要仪器第16页
        2.1.4 培养基第16页
        2.1.5 主要溶液第16-17页
    2.2 方法第17-25页
        2.2.1 分子生物学操作第17-18页
        2.2.2 重组菌构建第18页
        2.2.3 菌体培养以及全细胞催化剂制备第18页
        2.2.4 全细胞转化L-异亮氨酸 (L-Ile) 生成 α-酮-β-甲基正戊酸 (KMV)第18-19页
        2.2.5 重组大肠杆菌诱导培养条件优化第19-20页
        2.2.6 重组大肠杆菌全细胞转化底物条件优化第20页
        2.2.7 用易错PCR法对目标基因进行随机突变以及突变库的构建第20-21页
        2.2.8 高通量筛选方法第21页
        2.2.9 定点饱和突变第21-23页
        2.2.10 分析方法第23-25页
第三章 结果与讨论第25-45页
    3.1 L-氨基酸脱氨酶基因的克隆与表达第25-27页
        3.1.1 L-氨基酸脱氨酶重组菌的构建第25页
        3.1.2 四种L-氨基酸脱氨酶在大肠杆菌中诱导表达并全细胞转化L-Ile第25-27页
        3.1.3 L-氨基酸脱氨酶的表达对宿主菌生长的影响第27页
    3.2 重组大肠杆菌全细胞催化剂制备条件优化第27-30页
        3.2.1 最适诱导温度第27-28页
        3.2.2 最适诱导剂添加时刻以及最适诱导时间第28-29页
        3.2.3 最适IPTG浓度第29-30页
        3.2.4 种子液最适培养时间第30页
    3.3 重组大肠杆菌全细胞转化反应条件优化第30-37页
        3.3.1 最适反应p H第30-31页
        3.3.2 最适反应温度第31-33页
        3.3.3 最适细胞量第33-36页
        3.3.4 最适底物浓度第36-37页
    3.4 高通量筛选结果以及由正向突变株制备的全细胞催化剂性质第37-41页
        3.4.1 高通量筛选结果第37-38页
        3.4.2 不同底物浓度对突变株全细胞转化效率的影响第38-39页
        3.4.3 不同p H对突变株全细胞转化反应的影响第39-40页
        3.4.4 产物KMV对突变株全细胞转化反应速率的影响第40页
        3.4.5 转化时间对突变株全细胞催化剂活性的影响第40-41页
    3.5 突变株 7/23-6 的氨基酸脱氨酶第209位氨基酸位点饱和突变第41-45页
        3.5.1 第209位氨基酸位点饱和突变后突变子筛选第41-42页
        3.5.2 不同p H对突变株E209Q全细胞转化的影响第42页
        3.5.3 产物KMV对突变株E209Q全细胞转化反应速率的影响第42-43页
        3.5.4 转化时间对突变株E209Q全细胞催化剂活性的影响第43-45页
主要结论与展望第45-48页
致谢第48-49页
参考文献第49-53页
附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文第53页

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