| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1篇 前言 | 第16-18页 |
| 第2篇 文献综述 | 第18-38页 |
| 第1章 抗菌肽在抗肿瘤治疗中的应用 | 第18-30页 |
| 1.1 从抗菌肽到抗肿瘤多肽 | 第19-20页 |
| 1.2 抗肿瘤多肽的分类、选择性作用以及作用机制 | 第20-25页 |
| 1.2.1 抗肿瘤多肽的分类 | 第20-21页 |
| 1.2.2 抗肿瘤多肽的选择性作用 | 第21-22页 |
| 1.2.3 抗肿瘤多肽的作用机制 | 第22-25页 |
| 1.3 抗肿瘤多肽的修饰方法 | 第25-27页 |
| 1.4 抗肿瘤多肽在肿瘤治疗中的前景展望 | 第27-30页 |
| 第2章 肿瘤免疫治疗的研究进展 | 第30-38页 |
| 2.1 肿瘤免疫治疗的简介 | 第30-31页 |
| 2.2 主动和被动肿瘤免疫治疗 | 第31-32页 |
| 2.3 靶向性免疫调节通路 | 第32-35页 |
| 2.4 免疫刺激因子 | 第35-38页 |
| 第3篇 实验研究 | 第38-80页 |
| 第1章 TT-1 多肽对TT细胞的抗肿瘤作用研究及机制探讨 | 第38-60页 |
| 1.1 实验材料 | 第39-43页 |
| 1.1.1 细胞系 | 第39页 |
| 1.1.2 实验动物 | 第39页 |
| 1.1.3 主要试剂与仪器 | 第39-41页 |
| 1.1.4 主要溶液配置 | 第41-43页 |
| 1.2 实验方法 | 第43-51页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第43-44页 |
| 1.2.2 MTT法检测TT-1 多肽对TT细胞及Nthy-ori3-1 细胞存活率的影响 | 第44页 |
| 1.2.3 AV-PI双染检测TT-1 多肽对TT细胞凋亡的影响 | 第44-45页 |
| 1.2.4 Western blot检测TT-1 多肽对TT细胞中Bax和Bcl-2蛋白表达量的影响 | 第45-46页 |
| 1.2.5 流式细胞术检测TT-1 多肽对TT细胞中Caspase-3 和Caspase-9 表达量的影响 | 第46-47页 |
| 1.2.6 Real-time PCR检测Bax、Bcl-2、Caspase-3 和Caspase-9mRNA表达水平 | 第47-49页 |
| 1.2.7 TT异位肿瘤鼠模型的构建以及TT-1 多肽体内抗肿瘤实验研究 | 第49-50页 |
| 1.2.8 TT-1 多肽对TT异位肿瘤裸鼠的肿瘤抑制作用及相关组织形态学的影响 | 第50-51页 |
| 1.2.9 统计学分析 | 第51页 |
| 1.3 实验结果 | 第51-59页 |
| 1.3.1 TT-1 多肽对TT细胞及Nthy-ori3-1 细胞存活率的影响 | 第51-52页 |
| 1.3.2 TT-1 多肽诱导TT细胞凋亡实验结果 | 第52-53页 |
| 1.3.3 TT-1 多肽对TT细胞中Bax和Bcl-2 mRNA及蛋白表达的影响 | 第53-54页 |
| 1.3.4 TT-1 多肽对TT细胞中Caspase-3 和Caspase-9 mRNA及蛋白表达的影响 | 第54-55页 |
| 1.3.5 TT-1 多肽对TT裸鼠异位移植肿瘤的生长抑制作用 | 第55-58页 |
| 1.3.6 TT-1 多肽治疗后荷瘤鼠相关组织形态学改变 | 第58-59页 |
| 1.4 本章小结 | 第59-60页 |
| 第2章 TT-1 多肽联合IFN-α 对HepG2细胞的抗肿瘤作用研究及机制探讨 | 第60-80页 |
| 2.1 实验材料 | 第61-65页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第61页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第61页 |
| 2.1.3 主要试剂与仪器 | 第61-63页 |
| 2.1.4 主要溶液配置 | 第63-65页 |
| 2.2 实验方法 | 第65-71页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第65-66页 |
| 2.2.2 MTT法检测TT-1 多肽对HepG2细胞存活率的影响 | 第66页 |
| 2.2.3 HepG2荷瘤鼠模型的构建以及TT-1 多肽联合IFN-α 体内抗肿瘤实验研究 | 第66-67页 |
| 2.2.4 流式细胞术检测HepG2表面MICA的表达 | 第67-68页 |
| 2.2.5 ELISA检测HepG2细胞培养上清s MICA的表达 | 第68页 |
| 2.2.6 RT-PCR检测TT-1 多肽对ADAM10 mRNA表达的影响 | 第68-70页 |
| 2.2.7 Western blot检测ADAM10蛋白的表达 | 第70-71页 |
| 2.2.8 乳酸脱氢酶释放法检测TT-1 多肽联合IFN-α 对NK92细胞活性的影响 | 第71页 |
| 2.2.9 统计学分析 | 第71页 |
| 2.3 实验结果 | 第71-78页 |
| 2.3.1 TT-1 多肽对HepG2细胞存活率的影响 | 第71-72页 |
| 2.3.2 TT-1 多肽对HepG2荷瘤鼠异位移植肿瘤的生长抑制作用 | 第72-76页 |
| 2.3.3 TT-1 多肽对HepG2细胞表面MICA表达量的影响 | 第76-77页 |
| 2.3.4 TT-1 多肽对HepG2细胞培养上清sMICA的影响 | 第77-78页 |
| 2.3.5 TT-1 多肽联合IFN-α 治疗对NK92细胞的细胞毒性的影响 | 第78页 |
| 2.4 本章小结 | 第78-80页 |
| 第4篇 讨论 | 第80-92页 |
| 第1章 新型多肽TT-1 对TT细胞的生长抑制作用及机制探讨 | 第80-86页 |
| 1.1 TT-1 多肽对TT细胞的选择性抑制作用 | 第81页 |
| 1.2 TT-1 多肽抑制TT细胞增殖的体内实验研究 | 第81-82页 |
| 1.3 TT-1 多肽诱导TT细胞凋亡及相关机制 | 第82-86页 |
| 第2章 新型多肽TT-1 协同IFN-α 对HepG2细胞的抗肿瘤免疫治疗作用及机制探讨 | 第86-92页 |
| 2.1 TT-1 多肽对HepG2细胞的生长抑制作用 | 第86-87页 |
| 2.2 TT-1 多肽联合IFN-α 抑制HepG2细胞增殖的体内实验研究 | 第87页 |
| 2.3 TT-1 多肽联合IFN-α 的抗肿瘤免疫作用机制 | 第87-92页 |
| 第5篇 结论 | 第92-94页 |
| 创新点 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-116页 |
| 作者简介及在读期间所取得的科研成果 | 第116-117页 |
| 致谢 | 第117页 |
