| 缩写词表(ABBREVIATIONS) | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-25页 |
| 1. 膜脂的组成和结构 | 第14-17页 |
| 2. 膜脂的功能 | 第17-24页 |
| ·膜脂与类囊体膜中色素蛋白复合体的相互作用 | 第18-19页 |
| ·利用脂突变体的研究来确定脂的功能 | 第19-22页 |
| ·缺磷胁迫对膜脂的影响 | 第22-24页 |
| 3. 本研究的目的和意义 | 第24-25页 |
| 第二章 缺磷胁迫对小麦地上部分膜脂组成的影响 | 第25-35页 |
| 1. 前言 | 第25页 |
| 2. 材料和方法 | 第25-27页 |
| ·实验材料 | 第25-26页 |
| ·膜脂的提取和分离 | 第26页 |
| ·甘油脂及其脂肪酸组成分析 | 第26页 |
| ·光合气体交换与PSⅡ最大光化学效率的测定 | 第26-27页 |
| 3. 结果分析 | 第27-31页 |
| ·缺磷胁迫对小麦生长的影响 | 第27页 |
| ·缺磷胁迫对小麦地上部分膜脂组成的影响 | 第27-29页 |
| ·缺磷胁迫对MGDG、DGDG、PG 与SQDG 脂肪酸组成的影响 | 第29-31页 |
| ·缺磷胁迫对MGDG 脂肪酸组成的影响 | 第29页 |
| ·缺磷胁迫对DGDG 脂肪酸组成的影响 | 第29-30页 |
| ·缺磷胁迫对PG 脂肪酸组成的影响 | 第30页 |
| ·缺磷胁迫对SQDG 脂肪酸组成的影响 | 第30-31页 |
| ·缺磷胁迫对小麦光合气体交换与PSⅡ最大光化学效率影响 | 第31页 |
| 4. 讨论 | 第31-34页 |
| ·缺磷引起小麦地上部分中PG 含量下降,SQDG 和DGDG 含量上升 | 第31-33页 |
| ·缺磷胁迫未对四种甘油脂的脂肪酸组成造成显著影响 | 第33-34页 |
| 5. 小结 | 第34-35页 |
| 第三章 缺磷胁迫导致PG 含量降低的原因探讨 | 第35-43页 |
| 1. 前言 | 第35页 |
| 2. 材料和方法 | 第35-37页 |
| ·PG 水解酶活性的测定 | 第36页 |
| ·叶绿素含量的测定 | 第36页 |
| ·可溶性蛋白含量测定 | 第36-37页 |
| 3. 结果分析 | 第37-41页 |
| ·缺磷胁迫对完全展开后的小麦第一叶膜脂组成的影响 | 第37-38页 |
| ·缺磷胁迫对完全展开后的小麦第一叶中PG 水解酶活性的影响 | 第38-39页 |
| ·叶片刚刚完全展开时缺磷胁迫对小麦第一叶及第三叶膜脂组成的影响 | 第39-41页 |
| ·叶片刚刚完全展开时缺磷胁迫对小麦第一叶及第三叶中PG 水解酶活性的影响 | 第41页 |
| 4. 讨论 | 第41-42页 |
| ·PG 降解是缺磷胁迫下导致小麦叶片中PG 含量下降的一个重要原因 | 第41-42页 |
| ·PG 生物合成受阻是缺磷胁迫下导致小麦叶片中PG 含量下降的另外一个重要原因 | 第42页 |
| 5. 小结 | 第42-43页 |
| 第四章 缺磷条件下水解PG 的主要酶种类鉴定 | 第43-63页 |
| 1. 前言 | 第43-51页 |
| ·磷脂酶D | 第44-46页 |
| ·磷脂酶D 家族 | 第44-45页 |
| ·催化和底物特异性 | 第45页 |
| ·细胞功能 | 第45-46页 |
| ·磷脂酶C | 第46-48页 |
| ·磷脂酶C 家族 | 第46-47页 |
| ·细胞功能 | 第47-48页 |
| ·磷脂酶A_2 | 第48-51页 |
| ·磷脂酶A_2 家族 | 第48-49页 |
| ·鉴别与催化机制 | 第49-50页 |
| ·细胞功能 | 第50-51页 |
| ·磷脂酶A_1 与磷脂酶B | 第51页 |
| ·本研究的目的意义 | 第51页 |
| 2. 材料与方法 | 第51-52页 |
| 3. 结果分析 | 第52-59页 |
| ·PG 水解产物分析 | 第52-53页 |
| ·n-丁醇对体外酶解反应的影响 | 第53-55页 |
| ·盐酸普萘洛尔对体外酶解反应的影响 | 第55-56页 |
| ·硫酸新霉素对体外酶解反应的影响 | 第56-59页 |
| ·硫酸新霉素对体外酶混合物中PG 降解速度的影响 | 第56-57页 |
| ·硫酸新霉素对体外酶混合物中PG 水解产物生成量的影响 | 第57-59页 |
| 4. 讨论 | 第59-62页 |
| ·磷脂酶D 与缺磷小麦叶片中PG 的降解有关 | 第59-61页 |
| ·磷脂酶C 与缺磷小麦叶片中PG 的降解有关 | 第61-62页 |
| ·磷脂酶A 与缺磷小麦叶片中PG 的降解的关系的探讨 | 第62页 |
| 5. 小结 | 第62-63页 |
| 第五章 缺磷胁迫对烟草叶片中膜脂含量影响的研究 | 第63-78页 |
| 1. 前言 | 第63页 |
| 2. 材料方法 | 第63-66页 |
| ·试验材料 | 第63页 |
| ·PG 水解酶活性的测定 | 第63-64页 |
| ·RNA 提取及RT-PCR | 第64-66页 |
| ·植物总RNA 的提取(Trizol 试剂法) | 第64页 |
| ·DNase I (RNase free) 消化Total RNA | 第64-65页 |
| ·cDNA 第一条链的反转录合成 | 第65页 |
| ·RT-PCR 法检测转基因植株基因转录水平 | 第65-66页 |
| ·引物 | 第66页 |
| 3. 结果分析 | 第66-75页 |
| ·缺磷胁迫对烟草嫩叶中脂类物质组成及PG 水解酶活性的影响 | 第66-67页 |
| ·缺磷胁迫对烟草老叶中脂类物质组成及PG 水解酶活性的影响 | 第67-69页 |
| ·PG 水解产物分析 | 第69-70页 |
| ·n-丁醇对体外酶解反应的影响 | 第70-71页 |
| ·硫酸新霉素对体外酶解反应的影响 | 第71-73页 |
| ·硫酸新霉素对体外酶混合物中PG 降解速度的影响 | 第71-72页 |
| ·硫酸新霉素对体外酶混合物中PG 水解产物生成量的影响 | 第72-73页 |
| ·缺磷胁迫对烟草嫩叶中几种磷脂酶转录水平的影响 | 第73-74页 |
| ·缺磷胁迫对烟草老叶中几种磷脂酶转录水平的影响 | 第74-75页 |
| 4. 讨论 | 第75-77页 |
| ·缺磷条件下引起PG 含量下降的原因 | 第75页 |
| ·PLD 和PLC 与缺磷条件下烟草老叶中PG 的降解有关 | 第75-76页 |
| ·缺磷胁迫影响了烟草叶片中PLDα、PLD β、PLC 及PAT-1 的表达水平 | 第76-77页 |
| 5. 小结 | 第77-78页 |
| 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-93页 |
| 博士期间发表文章情况 | 第93-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
