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香雪兰UDP-葡萄糖:类黄酮3-O-葡萄糖基转移酶基因的克隆及其功能鉴定

摘要第1-6页
Abstract第6-9页
目录第9-12页
第一章 引言第12-27页
 1 植物花色形成的主要影响因子第12-16页
   ·植物色素的种类及组成第12-13页
   ·花色苷分子的修饰第13-14页
   ·花色苷的共着色作用第14页
   ·花色苷与金属离子的螯合作用第14-15页
   ·植物细胞液泡内pH 值第15页
   ·植物色素的定位第15-16页
   ·影响花色的外在因素第16页
   ·环境因素第16页
 2 植物花色苷生物合成的代谢途径第16-19页
   ·花色苷结构基因的代谢途径第16-18页
   ·花色苷调节基因的代谢途径第18-19页
 3 植物花色基因工程第19-22页
   ·外源目的基因导入法第20页
   ·反义抑制法第20页
   ·正义共抑制法第20-21页
   ·RNA 干扰法第21页
   ·导入调节基因法第21页
   ·辅助基因、多基因的导入第21-22页
 4 UF3GT 的研究进展第22-24页
   ·糖基化作用:次生代谢化合物的主要修饰反应第22-23页
   ·植物次生代谢糖基转移酶的功能分析第23页
   ·植物次生代谢糖基转移酶家族第23-24页
 5 香雪兰和矮牵牛的简介第24-25页
 6 本论文的研究意义与内容第25-27页
第二章 香雪兰Fh3GT1 基因的克隆及生物信息学分析第27-42页
 1 材料与方法第27-32页
   ·实验材料第27-28页
   ·实验方法第28-32页
 2 结果与分析第32-41页
   ·Fh3GT1 基因5'端片段的获得第32-33页
   ·Fh3GT1 基因3'端序列的获得第33-35页
   ·Fh3GT1 全长cDNA 序列的获得第35-37页
   ·Fh3GT1 全长cDNA 序列的生物信息学分析第37-41页
 3 讨论第41-42页
第三章 Fh3GT1 基因的表达模式分析第42-45页
 1 材料与方法第42-43页
   ·实验材料第42页
   ·实验方法第42-43页
 2 结果与分析第43-44页
   ·sqRT-PCR 循环数的确定第43页
   ·Fh3GT1 基因在香雪兰不同开花时期及不同器官的表达分析第43-44页
   ·Fh3GT1 基因在不同花色香雪兰品种间的表达分析第44页
 3 讨论第44-45页
第四章 Fh3GT1 蛋白体外表达及其功能验证第45-53页
 1 材料与方法第45-49页
   ·实验材料第45-46页
   ·实验方法第46-49页
 2 结果与分析第49-52页
   ·重组原核表达载体的构建第49-50页
   ·重组Fh3GT1 蛋白的表达及纯化第50-52页
   ·体外酶活反应的检测(HPLC 法)第52页
 3 讨论第52-53页
第五章 Fh3GT1 基因的亚细胞定位第53-57页
 1 材料与方法第53-54页
   ·实验材料第53-54页
   ·实验方法第54页
 2 结果与分析第54-56页
   ·表达载体pBI-smGFP-Fh3GT1 的构建第54-55页
   ·重组质粒pBI-smGFP-Fh3GT1 在洋葱表皮细胞中的瞬时表达第55-56页
 3 讨论第56-57页
第六章 Fh3GT1 基因在矮牵牛中的表达及其功能分析第57-75页
 1 材料与方法第57-64页
   ·实验材料第57-58页
   ·实验方法第58-64页
 2 结果与分析第64-73页
   ·pBI121-Fh3GT1 表达载体的构建第64-65页
   ·pART27-Fh3GT1i 表达载体的构建第65-66页
   ·重组表达载体质粒转化农杆菌EHA105 的鉴定第66-67页
   ·矮牵牛再生体系的建立及选择压的确定第67-68页
   ·转基因矮牵牛植株基因组水平的检测第68-70页
   ·转基因矮牵牛植株内源UF3GT 基因表达水平的检测第70页
   ·转基因矮牵牛植株花色苷总含量的变化第70-72页
   ·转基因矮牵牛植株花色的变化第72-73页
 3 讨论第73-75页
   ·农杆菌介导矮牵牛的遗传转化第73页
   ·转基因矮牵牛花色变化分析第73-75页
结论与创新点第75-77页
参考文献第77-89页
致谢第89-90页
在研期间公开发表的论文情况第90页

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