首页--医药、卫生论文--肿瘤学论文--一般性问题论文--肿瘤治疗学论文

迁移侵袭抑制蛋白(MIIP)对肿瘤血管生成的影响及其分子机制研究

摘要第3-5页
Abstract第5-7页
第1章 综述第15-37页
    1.1 肿瘤血管生成的研究第15-19页
        1.1.1 肿瘤血管生成的概述第15-16页
        1.1.2 肿瘤血管生成的启动第16页
        1.1.3 肿瘤血管的特点及其微环境第16-19页
    1.2 迁移侵袭抑制蛋白(MIIP)功能简介第19-25页
        1.2.1 MIIP结构特点第19-20页
        1.2.2 MIIP在肿瘤中的作用第20-21页
        1.2.3 MIIP抑制肿瘤细胞迁移和侵袭的机制第21-24页
        1.2.4 MIIP调节细胞有丝分裂第24-25页
        1.2.5 MIIP小结第25页
    1.3 血管生成的主要影响因素第25-34页
        1.3.1 血管内皮生长因子/血管内皮生长因子受体(VEGF/VEGFR)第25-27页
        1.3.2 FGF/FGFR第27-28页
        1.3.3 血小板源性生长因子及其受体(PDGF/PDGFR)第28页
        1.3.4 血管生成素(angiopoietin,ANG)及其受体(Tie-2)构成的信号转导系统第28-29页
        1.3.5 肝细胞生长因子(hepatocyte growth factor,HGF)及其受体 c-Met第29-30页
        1.3.6 转染过程中的重排(RET)第30页
        1.3.7 FAK(Focal adhesion kinase)信号通路与血管生成第30-31页
        1.3.8 抑制肿瘤血管生成的有关药物第31-32页
        1.3.9 基质金属蛋白酶家族(Matrix metalloproteinases,MMPs)第32-33页
        1.3.10 小结第33-34页
    1.4 抗血管生成的研究第34-37页
        1.4.1 抗血管疗法的原理第34-35页
        1.4.2 微环境稳态对抗血管疗法的重要性第35-36页
        1.4.3 血管标志物第36-37页
第2章 MIIP对血管内皮细胞血管生成的影响第37-67页
    2.1 实验材料与试剂第37-41页
        2.1.1 主要试剂与材料第37-39页
        2.1.2 抗体第39页
        2.1.3 仪器设备第39-40页
        2.1.4 试剂配制第40-41页
    2.2 实验方法第41-51页
        2.2.1 真核表达载体pcDNA3.0-MIIP的构建第41-44页
        2.2.2 细胞处理第44-45页
            2.2.2.1 细胞冻存第44-45页
            2.2.2.2 细胞复苏第45页
            2.2.2.3 细胞瞬时转染第45页
        2.2.3 Western blotting第45-47页
        2.2.4 划痕愈合实验(Wound healing assay)第47页
        2.2.5 HUVEC体外迁移实验第47-48页
        2.2.6 HUVEC体外侵袭实验第48页
        2.2.7 HUVEC体外成管实验(Tube formation assay)第48-49页
        2.2.8 裸鼠皮下HUVEC+ Matrigel plug体内血管新生实验第49-50页
        2.2.9 MTT比色法检测内皮细胞生长曲线第50-51页
        2.2.10 胸腺嘧啶核苷酸类似物(EdU法)检测内皮细胞增殖实验第51页
    2.3 实验结果第51-62页
        2.3.1 真核表达载体pcDNA3.0-MIIP的构建及鉴定第51-52页
        2.3.2 外源MIIP转染HUVEC及MIIP表达水平的鉴定第52-53页
        2.3.3 MIIP抑制HUVEC的迁移能力第53-55页
        2.3.4     MIIP抑制HUVEC的侵袭能力第55页
        2.3.5 MIIP对HUVEC体外成管(Tube formation)能力的影响第55-57页
        2.3.6 MIIP在体内对HUVEC血管新生的影响第57-58页
        2.3.7 MIIP对HUVEC增殖作用的影响第58-60页
        2.3.8 MIIP对HUVEC中相关信号通路的影响第60-62页
    2.4 讨论第62-65页
    2.5 结论第65-67页
第3章 不同MIIP表达水平的肿瘤细胞条件培养基对血管生成能力的影响第67-87页
    3.1 实验材料与试剂第68-70页
        3.1.1 菌株、质粒和细胞株第68页
        3.1.2 仪器设备第68-69页
        3.1.3 试剂第69页
        3.1.4 实验动物第69-70页
        3.1.5 试剂配制第70页
    3.2 实验方法第70-73页
        3.2.1 MIIP稳定转染细胞系的建立第70-71页
        3.2.2 Western blotting检测MIIP表达水平第71页
        3.2.3 条件培养基(Conditioned Medium)的浓缩与分析第71-72页
        3.2.4 鸡胚尿囊膜实验(Chorioallantoic Membrane Assay)第72页
        3.2.5 大鼠主动脉环形成实验(Rat aortic ring assay)第72-73页
    3.3 实验结果第73-84页
        3.3.1 pcDNA3.0-MIIP转染MDA-MB-231乳腺癌细胞及MIIP表达水平鉴定第73-74页
        3.3.2 shMIIP在BT-549乳腺癌细胞中MIIP表达水平鉴定第74-75页
        3.3.3 MIIP/MDA-MB-231条件培养基抑制鸡胚尿囊膜血管生成反应第75-77页
        3.3.4 shMIIP/BT549条件培养基促进鸡胚尿囊膜血管生成反应第77-78页
        3.3.5 MIIP/MDA-MB-231条件培养基抑制大鼠主动脉环形成实验第78-80页
        3.3.6 shMIIP/BT549的条件培养基促进大鼠主动脉环形成实验第80-82页
        3.3.7 条件培养基中VEGF-A和MMP-2,MMP-9含量分析第82-84页
    3.4 讨论第84-86页
    3.5 结论第86-87页
第4章 MIIP抗肿瘤血管生成的机制研究第87-97页
    4.1 实验材料与试剂第87-89页
        4.1.1 载体第87页
        4.1.2 实验动物第87页
        4.1.3 仪器设备第87-88页
        4.1.4 主要试剂第88-89页
        4.1.5 抗体第89页
        4.1.6 试剂配制第89页
    4.2 实验方法第89-91页
        4.2.1 裸鼠种植瘤第89-90页
        4.2.2 免疫组织化学第90-91页
        4.2.3 细胞培养第91页
    4.3 实验结果第91-93页
        4.3.1 MIIP/MDA-MB-231对裸鼠移植瘤组织中CD31表达水平的影响第91-92页
        4.3.2 MIIP/MDA-MB-231中VEGF-A,HIF1-α表达水平第92-93页
    4.4 讨论第93-95页
    4.5 结论第95-97页
第5章 结论第97-99页
参考文献第99-113页
附录第113-115页
致谢第115-117页
攻读博士学位期间科研成果第117页

论文共117页,点击 下载论文
上一篇:古代中国生活审美论
下一篇:复合二氧化硅纳米粒子与纳米金传感的MicroRNA电化学发光分析方法研究