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山羊关节炎脑炎病毒编码蛋白逃逸先天性免疫的分子机制

摘要第3-5页
abstract第5-6页
第1章 文献综述第10-28页
    1.1 CAEV概述第10-21页
        1.1.1 分类地位第10-12页
        1.1.2 分子生物学研究第12-16页
        1.1.3 生物学周期简述第16-17页
        1.1.4 致病机理第17-18页
        1.1.5 流行病学特点及临床特征第18-20页
        1.1.6 诊断与防治第20-21页
    1.2 CAEV感染的免疫反应第21-24页
        1.2.1 CAEV引起的先天免疫应答第22-23页
        1.2.2 CAEV引起的适应性免疫应答第23-24页
    1.3 I型 IFN概述第24-27页
        1.3.1 产生IFN-β信号通路介绍第25-26页
        1.3.2 I型 IFN信号传导和ISG的诱导第26-27页
    1.4 研究目的及意义第27-28页
第2章 不同CAEV蛋白对IFN-β产生的调节作用第28-52页
    2.1 引言第28页
    2.2 实验材料第28-35页
        2.2.1 实验用细胞、病毒、菌株与载体第28-29页
        2.2.2 主要试剂第29-35页
        2.2.3 实验仪器设备第35页
    2.3 实验方法第35-43页
        2.3.1 基因克隆第35-37页
        2.3.2 载体构建及验证第37-39页
        2.3.3 细胞转染及接毒(以12孔板为例)第39-40页
        2.3.4 真核载体表达验证第40页
        2.3.5 总RNA提取及cDNA合成第40-41页
        2.3.6 相对荧光定量PCR检测第41-42页
        2.3.7 荧光素酶活性检测第42-43页
    2.4 实验结果与分析第43-49页
        2.4.1 CAEV基因扩增第43-44页
        2.4.2 真核表达载体构建及验证第44-46页
        2.4.3 过表达病毒蛋白对SeV复制的影响第46-47页
        2.4.4 病毒蛋白对IFN-β的影响第47-49页
    2.5 讨论第49-50页
        2.5.1 CAEV蛋白对SeV增殖的影响第49-50页
        2.5.2 CAEV蛋白对IFN-β的影响第50页
    2.6 本章小结第50-52页
第3章 DU影响IFN-β产生的分子机制第52-66页
    3.1 引言第52页
    3.2 实验材料第52-53页
        3.2.1 实验用细胞、病毒、菌株与载体第52页
        3.2.2 主要试剂第52-53页
    3.3 实验方法第53-55页
        3.3.1 基因克隆第53-54页
        3.3.2 载体构建及验证第54-55页
        3.3.3 相对荧光定量PCR检测第55页
    3.4 实验结果与分析第55-62页
        3.4.1 DU对 IFN-β的抑制作用不受标签蛋白的影响第55-57页
        3.4.2 DU促进SeV和 VSV复制第57-59页
        3.4.3 DU剂量依赖性的抑制IFN-β的表达第59-60页
        3.4.4 DU在 IFN-β产生的信号通路上的作用第60-62页
    3.5 讨论第62-63页
    3.6 本章小结第63-66页
第4章 CAEV蛋白Vif对 IFN-β转录表达的影响第66-78页
    4.1 引言第66页
    4.2 实验材料第66页
        4.2.1 实验用细胞、病毒、菌株与载体第66页
        4.2.2 主要试剂第66页
    4.3 实验方法第66-68页
        4.3.1 基因克隆第66-68页
        4.3.2 载体构建及验证第68页
    4.4 实验结果与分析第68-76页
        4.4.1 Vif抑制IFN-β信号通路第68-70页
        4.4.2 Vif抑制的信号通路中位于IRF3上游的信号分子第70-72页
        4.4.3 Vif中有关键结构域影响其抑制IFN-β的功能第72-76页
    4.5 讨论第76-77页
    4.6 本章小结第77-78页
结论第78-80页
参考文献第80-90页
附录第90-92页
发表论文和参加科研情况说明第92-94页
致谢第94页

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