| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略词 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-43页 |
| 1 花的开放和闭合 | 第15-28页 |
| 1.1 花开放和闭合的多样性 | 第15-16页 |
| 1.2 花开放和闭合的调控机理 | 第16-18页 |
| 1.2.1 碳水化合物代谢 | 第16-17页 |
| 1.2.2 细胞壁的扩张 | 第17页 |
| 1.2.3 水分 | 第17页 |
| 1.2.4 激素调节 | 第17-18页 |
| 1.3 外部因子对花开放和闭合的调节 | 第18-21页 |
| 1.3.1 温度、光照和湿度对花开放的影响 | 第18-20页 |
| 1.3.2 温度和光照对花闭合的影响 | 第20页 |
| 1.3.3 黑暗和光照的周期性对花开放和闭合的影响 | 第20-21页 |
| 1.4 内在节律对花开放和闭合的调节 | 第21-22页 |
| 1.5 花开放和闭合的分子机制研究 | 第22-24页 |
| 1.6 水稻颖花开放的机理探讨 | 第24-27页 |
| 1.6.1 浆片膨大的机制 | 第25-26页 |
| 1.6.2 控制水稻颖花开放的因素 | 第26-27页 |
| 1.7 水稻颖花闭合的机理探讨 | 第27-28页 |
| 1.8 植物激素茉莉酸(JA)对水稻开花的影响 | 第28页 |
| 2 茉莉酸对植物发育的影响 | 第28-33页 |
| 2.1 茉莉酸对双子叶植物生殖发育的影响 | 第30-32页 |
| 2.2 茉莉酸对单子叶植物生殖发育的影响 | 第32-33页 |
| 3 茉莉酸的生物合成 | 第33-34页 |
| 4 茉莉酸的信号转导 | 第34-40页 |
| 4.1 参与茉莉酸信号的主要组分 | 第34-38页 |
| 4.1.1 受体SCF复合体 | 第34-35页 |
| 4.1.2 JAZ蛋白 | 第35页 |
| 4.1.3 JAZs的共抑制子 | 第35-36页 |
| 4.1.4 参与茉莉酸信号途径的转录因子以及中介体 | 第36-38页 |
| 4.2 茉莉酸的信号途径 | 第38-40页 |
| 5 水稻OPR家族的研究进展 | 第40-41页 |
| 6 本研究的目的意义 | 第41-43页 |
| 第二章 水稻开颖突变体og1的表型鉴定 | 第43-61页 |
| 1 材料与方法 | 第43-48页 |
| 1.1 材料来源与种植 | 第43页 |
| 1.2 农艺性状的调查 | 第43-44页 |
| 1.3 开花时间及花后闭合率的调查 | 第44页 |
| 1.4 种子淀粉含量的测定 | 第44页 |
| 1.5 浆片的树脂切片观察 | 第44页 |
| 1.6 浆片的透射电镜观察 | 第44-45页 |
| 1.7 花粉粒的育性观察 | 第45页 |
| 1.7.1 I_2/KI染色观察 | 第45页 |
| 1.7.2 花粉粒的体内萌发实验 | 第45页 |
| 1.8 花药的半薄切片观察 | 第45-46页 |
| 1.9 Evans Blue染色观察 | 第46页 |
| 1.10 TUNEL检测 | 第46-47页 |
| 1.10.1 样品组织的石蜡切片制备 | 第46-47页 |
| 1.10.2 死亡细胞的检测 | 第47页 |
| 1.11 RNA的提取及基因表达分析 | 第47-48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-59页 |
| 2.1 og1突变体表型分析 | 第48-50页 |
| 2.2 og1突变体浆片在开花过程中的观察 | 第50-53页 |
| 2.3 og1突变体的浆片细胞在开花后的降解过程出现了滞后 | 第53-56页 |
| 2.4 og1突变体的育性正常 | 第56-59页 |
| 3 讨论 | 第59-61页 |
| 3.1 突变体og1通过影响浆片的代谢调控水稻异常开花 | 第59-60页 |
| 3.2 og1突变体影响水稻产量 | 第60-61页 |
| 第三章 OG1基因的图位克隆及转基因验证 | 第61-73页 |
| 1 材料与方法 | 第61-67页 |
| 1.1 水稻叶片总DNA的提取 | 第61-62页 |
| 1.2 分子标记的开发 | 第62页 |
| 1.3 PCR检测 | 第62-63页 |
| 1.4 标记筛选及候选基因的预测 | 第63页 |
| 1.5 转基因干扰载体和互补载体的构建 | 第63-64页 |
| 1.6 亚细胞定位及GUS表达载体的构建 | 第64页 |
| 1.7 农杆菌冻融转化和遗传转化 | 第64-65页 |
| 1.8 转基因阳性植株的鉴定 | 第65页 |
| 1.9 组织的GUS染色分析 | 第65页 |
| 1.10 植物组织可溶性总蛋白的提取及SDS-PAGE电泳 | 第65-66页 |
| 1.11 Western blot检测 | 第66-67页 |
| 2 结果与分析 | 第67-72页 |
| 2.1 OG1基因的图位克隆和Western blot检测 | 第67-68页 |
| 2.2 OG1基因的干扰和互补转基因验证 | 第68-70页 |
| 2.3 OsOPR7蛋白的亚细胞定位及时空表达分析 | 第70-72页 |
| 3 讨论 | 第72-73页 |
| 第四章 OsOPR7蛋白在茉莉酸信号途径中的功能研究 | 第73-89页 |
| 1 材料和方法 | 第73-75页 |
| 1.1 OsOPR7及其同源蛋白氨基酸序列比对及进化树聚类分析 | 第73页 |
| 1.2 多克隆抗体的制备 | 第73-74页 |
| 1.3 体外酶活分析 | 第74-75页 |
| 1.4 浆片渗透压和可溶性糖含量的测定 | 第75页 |
| 2 结果与分析 | 第75-87页 |
| 2.1 OsOPR7编码一个有功能的OPR蛋白 | 第75-79页 |
| 2.2 外源茉莉酸(JA)处理能够恢复突变体og1的闭颖表型 | 第79-81页 |
| 2.3 突变体og1浆片中糖的代谢发生异常 | 第81-87页 |
| 3 讨论 | 第87-89页 |
| 第五章 全文总结与讨论 | 第89-95页 |
| 1 总结 | 第89-91页 |
| 1.1 og1是一个开花时间及开花过程紊乱的突变体 | 第89页 |
| 1.2 OG1编码一个茉莉酸合成途径的还原酶 | 第89-90页 |
| 1.3 og1突变体的浆片代谢出现异常 | 第90页 |
| 1.4 og1突变体的种子产量显著下降 | 第90-91页 |
| 2 讨论 | 第91-93页 |
| 2.1 茉莉酸能够通过影响浆片的糖类代谢来参与水稻的开花过程 | 第91页 |
| 2.2 茉莉酸能够影响开花后浆片细胞的PCD过程 | 第91-92页 |
| 2.3 突变体og1是可育的,这与OsOPR7在其它物种中的同源基因以及其它茉莉酸缺失突变体是不同的 | 第92-93页 |
| 3 本研究的创新之处 | 第93-95页 |
| 参考文献 | 第95-107页 |
| 附录 | 第107-115页 |
| 在读期间发表论文 | 第115-117页 |
| 致谢 | 第117页 |
