| 摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 引言 | 第7-9页 |
| 第一章 材料和方法 | 第9-18页 |
| 1.1 实验材料 | 第9-12页 |
| 1.1.1 实验动物 | 第9页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第9-10页 |
| 1.1.3 主要实验材料及实验试剂 | 第10-11页 |
| 1.1.4 主要试剂配制方法 | 第11-12页 |
| 1.2 构建Mxra7基因敲除小鼠的鉴定 | 第12-13页 |
| 1.2.1 取小鼠尾尖并对其进行标记 | 第12页 |
| 1.2.2 提取DNA | 第12-13页 |
| 1.2.3 PCR及琼脂糖凝胶电泳 | 第13页 |
| 1.3 WT与Mxra7~(-/-)小鼠的组织中MXRA7蛋白的免疫荧光检测 | 第13-14页 |
| 1.3.1 组织切片制作 | 第13页 |
| 1.3.2 组织免疫荧光检测步骤 | 第13-14页 |
| 1.4 WT与Mxra7~(-/-)小鼠的组织中MXRA7蛋白的免疫组化检测 | 第14-15页 |
| 1.4.1 取材及标本处理 | 第14页 |
| 1.4.2 免疫组化检测的步骤 | 第14-15页 |
| 1.5 WT与Mxra7~(-/-)小鼠组织中MXRA7蛋白浓度的ELISA检测 | 第15-16页 |
| 1.5.1 组织蛋白提取及蛋白定量 | 第15页 |
| 1.5.2 ELISA的步骤 | 第15-16页 |
| 1.6 WT与Mxra7~(-/-)小鼠的肝损伤模型中MXRA7蛋白的检测 | 第16页 |
| 1.6.1 建立小鼠肝损伤模型 | 第16页 |
| 1.6.2 小鼠组织取材及标本处理 | 第16页 |
| 1.6.3 免疫组化的检测步骤 | 第16页 |
| 1.7 WT与Mxra7~(-/-)小鼠的Matrigel模型 | 第16-18页 |
| 1.7.1 建立Matrigel模型及取材 | 第16-18页 |
| 第二章 结果 | 第18-22页 |
| 2.1 构建Mxra7基因敲除小鼠的鉴定结果 | 第18页 |
| 2.2 WT与Mxra7~(-/-)小鼠的组织中MXRA7蛋白的免疫荧光检测结果 | 第18-19页 |
| 2.2.1 MXRA7蛋白在WT与Mxra7~(-/-)小鼠各个组织中的分布 | 第18-19页 |
| 2.2.2 MXRA7蛋白在WT小鼠各个组织中的表达 | 第19页 |
| 2.3 WT与Mxra7~(-/-)小鼠的MXRA7蛋白的免疫组化检测结果 | 第19-20页 |
| 2.4 WT与Mxra7~(-/-)小鼠的组织中MXRA7蛋白的ELISA检测结果 | 第20页 |
| 2.5 WT与Mxra7~(-/-)小鼠的肝损伤模型中MXRA7蛋白免疫组化检测结果 | 第20-21页 |
| 2.6 WT与Mxra7~(-/-)小鼠的Matrigel胶中新生血管的观察结果 | 第21-22页 |
| 第三章 讨论 | 第22-24页 |
| 3.1 MXRA7蛋白在不同组织中的表达水平 | 第22页 |
| 3.2 Mxra7基因敲除对小鼠组织发育和功能的影响 | 第22-24页 |
| 结论 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-28页 |
| 综述 | 第28-36页 |
| 综述的参考文献 | 第34-36页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第36-37页 |
| 附录 (主要符号表) | 第37-38页 |
| 致谢 | 第38-39页 |
