| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-16页 |
| 第一部分：癫痫持续状态后神经元损伤修复过程中大麻素2型受体和自噬相关蛋白LC3、mTOR的表达研究 | 第16-53页 |
| 1 前言 | 第16-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-27页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第18-20页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第18-19页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第19-20页 |
| 2.2 研究对象和分组 | 第20页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.2.2 实验分组 | 第20页 |
| 2.3 研究方法 | 第20-27页 |
| 2.3.1 大鼠癫痫持续状态模型的建立 | 第20-21页 |
| 2.3.2 脑电图的记录 | 第21页 |
| 2.3.3 HE染色 | 第21页 |
| 2.3.4 TUNEL染色 | 第21-22页 |
| 2.3.5 CB2R和neu N的双重免疫荧光染色 | 第22页 |
| 2.3.6 mTOR和neu N双重免疫荧光染色 | 第22-23页 |
| 2.3.7 LC3和neu N双重免疫荧光染色 | 第23页 |
| 2.3.8 Western blotting检测技术 | 第23-24页 |
| 2.3.9 Quantitative real-time PCR（q PCR）检测技术 | 第24-26页 |
| 2.3.10 数据分析 | 第26-27页 |
| 3 结果 | 第27-49页 |
| 3.1 大鼠的癫痫症状学观察 | 第27页 |
| 3.2 大鼠的脑电图监测 | 第27-28页 |
| 3.3 癫痫持续状态后海马组织的病理学所见 | 第28-30页 |
| 3.4 癫痫持续状态后海马神经元凋亡情况 | 第30-34页 |
| 3.5 癫痫持续状态后海马神经元中CB2R的表达变化 | 第34-39页 |
| 3.6 癫痫持续状态后海马神经元中LC3的表达变化 | 第39-44页 |
| 3.7 癫痫持续状态后海马神经元中mTOR的表达变化 | 第44-49页 |
| 4 讨论 | 第49-52页 |
| 4.1 在癫痫持续状态后海马神经元中CB2R的表达及变化规律 | 第49-50页 |
| 4.2 在癫痫持续状态后海马神经元中自噬相关蛋白LC3、mTOR的表达变化 | 第50-51页 |
| 4.3 在癫痫持续状态后海马神经元损伤修复的早期阶段CB2R与自噬相关蛋白LC3、mTOR的关系 | 第51-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 第二部分：癫痫持续状态后神经元损伤修复过程中大麻素2型受体对神经元自噬的影响 | 第53-76页 |
| 1 前言 | 第53-55页 |
| 2 材料与方法 | 第55-57页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第55-56页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第55-56页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第56页 |
| 2.2 研究对象和分组 | 第56-57页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第56页 |
| 2.2.2 实验分组 | 第56-57页 |
| 2.3 实验方法 | 第57页 |
| 2.3.1 大鼠癫痫持续状态模型的建立 | 第57页 |
| 2.3.2 侧脑室给药 | 第57页 |
| 2.3.3 HE染色 | 第57页 |
| 2.3.4 TUNEL染色 | 第57页 |
| 2.3.5 双重免疫荧光染色 | 第57页 |
| 2.3.6 Western blotting检测技术 | 第57页 |
| 3 结果 | 第57-72页 |
| 3.1 大鼠的癫痫症状学观察 | 第57-58页 |
| 3.2 癫痫持续状态后海马组织的病理学所见 | 第58-59页 |
| 3.3 癫痫持续状态后海马神经元凋亡情况 | 第59-62页 |
| 3.4 癫痫持续状态后海马神经元损伤修复的早期阶段LC3的表达变化 | 第62-65页 |
| 3.5 癫痫持续状态后海马神经元损伤修复的早期阶段mTOR的表达变化 | 第65-69页 |
| 3.6 癫痫持续状态后海马组织中CB2R对自噬相关蛋白表达的影响 | 第69-71页 |
| 3.7 癫痫持续状态后海马组织中CB2R对凋亡相关蛋白Caspase-3 表达的影响 | 第71-72页 |
| 4 讨论 | 第72-75页 |
| 5 结论 | 第75-76页 |
| 第三部分：大麻素2型受体通过mTOR信号通路调控神经元样PC12细胞自噬的机制研究 | 第76-95页 |
| 1 前言 | 第76-77页 |
| 2 材料与方法 | 第77-83页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第77-79页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第77-78页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第78-79页 |
| 2.2 研究对象和分组 | 第79-80页 |
| 2.2.1 实验对象-PC12细胞 | 第79页 |
| 2.2.2 实验分组 | 第79-80页 |
| 2.3 实验方法 | 第80-83页 |
| 2.3.1 CB2R免疫荧光染色 | 第80页 |
| 2.3.2 PC12细胞的培养及转分化 | 第80-81页 |
| 2.3.3 无镁细胞外液诱导神经元样PC12细胞放电 | 第81页 |
| 2.3.4 LC3免疫荧光染色 | 第81页 |
| 2.3.5 CCK-8 检测细胞存活率 | 第81页 |
| 2.3.6 Western blotting检测技术 | 第81-83页 |
| 3 结果 | 第83-92页 |
| 3.1 PC12细胞中CB2R的表达 | 第83页 |
| 3.2 细胞的培养与诱导 | 第83-84页 |
| 3.3 神经元样PC12细胞在无镁细胞外液处理后的放电记录 | 第84页 |
| 3.4 无镁溶液处理后神经元样PC12细胞中LC3的表达变化 | 第84-85页 |
| 3.5 无镁溶液处理后CB2R对神经元样PC12细胞存活率的影响 | 第85-86页 |
| 3.6 无镁溶液处理后CB2R对神经元样PC12细胞自噬相关蛋白表达的影响 | 第86-90页 |
| 3.7 无镁溶液处理后CB2R对神经元样PC12细胞凋亡相关蛋白Caspase-3 表达的影响 | 第90-92页 |
| 4 讨论 | 第92-94页 |
| 5 结论 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-103页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第103-105页 |
| 综述 | 第105-115页 |
| 1.大麻素2型受体在脑组织中的表达 | 第106-107页 |
| 2.大麻素2型受体在脑组织中的分布及功能 | 第107-108页 |
| 3.大麻素2型受体在脑组织中的可诱导的特性，及对神经精神类疾病的调控 | 第108-109页 |
| 4.大麻素2型受体作为治疗靶点的局限性 | 第109页 |
| 参考文献 | 第109-115页 |
| 攻读学位期间取得的科研成果 | 第115-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
| 个人简历 | 第117页 |
