| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第12-14页 |
| 1 前言 | 第14-19页 |
| 1.1 选题依据 | 第14-16页 |
| 1.2 研究内容 | 第16页 |
| 1.3 研究假设 | 第16-18页 |
| 1.4 技术路线 | 第18-19页 |
| 2 文献综述 | 第19-26页 |
| 2.1 细胞自噬 | 第19-22页 |
| 2.1.1 细胞自噬概述 | 第19页 |
| 2.1.2 细胞自噬的分类 | 第19-20页 |
| 2.1.3 细胞自噬的信号通路调控 | 第20-22页 |
| 2.2 运动对线粒体自噬的影响 | 第22-23页 |
| 2.2.1 线粒体自噬 | 第22页 |
| 2.2.2 运动对线粒体自噬的影响 | 第22-23页 |
| 2.3 FUNDC1介导的线粒体自噬 | 第23-26页 |
| 2.3.1 FUNDC1的结构和功能 | 第23-24页 |
| 2.3.2 FUNDC1在线粒体分裂、融合及自噬中的作用 | 第24页 |
| 2.3.3 运动诱导线粒体自噬过程中FUNDC1的调控 | 第24-26页 |
| 3 研究对象与方法 | 第26-37页 |
| 3.1 实验对象及分组 | 第26页 |
| 3.2 运动方案 | 第26-27页 |
| 3.3 测试样本的采集与处理 | 第27-28页 |
| 3.3.1 检测线粒体形态样品制备 | 第27页 |
| 3.3.2 免疫荧光检测样品制备 | 第27页 |
| 3.3.3 骨路肌线粒体制备 | 第27-28页 |
| 3.4 主要实验仪器 | 第28-29页 |
| 3.5 主要试剂 | 第29-32页 |
| 3.5.1 常用试剂 | 第29-30页 |
| 3.5.2 主要试剂配方 | 第30-32页 |
| 3.6 测试指标与方法 | 第32-36页 |
| 3.6.1 透射电镜观察线粒体、自噬体的变化 | 第32页 |
| 3.6.2 免疫荧光技术观察蛋白共定位情况 | 第32-33页 |
| 3.6.3 Westernblot测定蛋白含量 | 第33-35页 |
| 3.6.4 检测比目鱼肌线粒体CS的含量 | 第35-36页 |
| 3.7 数据统计与处理 | 第36-37页 |
| 4 研究结果 | 第37-59页 |
| 4.1 线粒体形态变化 | 第37-40页 |
| 4.1.1 线粒体、自噬体超微结构变化 | 第37-39页 |
| 4.1.2 线粒体分布变化 | 第39-40页 |
| 4.2 线粒体功能变化 | 第40-44页 |
| 4.2.1 线粒体生物合成标志PGC-1α蛋白表达 | 第40-42页 |
| 4.2.2 呼吸链相关蛋白表达 | 第42-43页 |
| 4.2.3 线粒体定量酶CS含量 | 第43-44页 |
| 4.3 免疫荧光检测 | 第44-52页 |
| 4.4 线粒体自噬相关蛋白表达变化 | 第52-59页 |
| 5 分析与讨论 | 第59-65页 |
| 5.1 不同运动对骨骼肌线粒体形态结构和功能的影响 | 第59-63页 |
| 5.1.1 不同运动对骨骼肌线粒体形态结构及分布的影响 | 第59-60页 |
| 5.1.2 不同运动对骨骼肌线粒体功能的影响 | 第60-63页 |
| 5.2 FUNDC1在运动诱导骨骼肌线粒体自噬中的作用 | 第63-65页 |
| 6 结论 | 第65-66页 |
| 6.1 研究结论 | 第65页 |
| 6.2 研究展望 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-76页 |
| 个人简历在读期间发表的学术论文与研究成果 | 第76页 |
