| 缩略词表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-20页 |
| 1.1 促血小板生成素 | 第9-14页 |
| 1.1.1 促血小板生成素的生物学作用 | 第10页 |
| 1.1.2 促血小板生成素的结构 | 第10-11页 |
| 1.1.3 促血小板生成素的信号传导途径 | 第11-12页 |
| 1.1.4 促血小板生成素的体外检测方法 | 第12-14页 |
| 1.2 C-MPL | 第14-15页 |
| 1.3 C-FOS启动子 | 第15-16页 |
| 1.3.1 C-FOS结构 | 第15页 |
| 1.3.2 C-FOS的调节机制 | 第15-16页 |
| 1.4 双荧光素酶检测系统 | 第16-17页 |
| 1.5 检测方法原理 | 第17-18页 |
| 1.6 研究内容与立论依据 | 第18-20页 |
| 第二章 真核表达载体构建 | 第20-36页 |
| 2.1 实验材料和器材 | 第20-21页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.2 实验器材 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-29页 |
| 2.2.1 GFP-PCDNA3.1真核表达载体的构建 | 第21-27页 |
| 2.2.2 C-MPL-PCDNA3.1真核表达载体的构建 | 第27-29页 |
| 2.3 实验结果 | 第29-34页 |
| 2.3.1 GFP-PCDNA3.1真核表达载体的鉴定 | 第29-32页 |
| 2.3.2 C-MPL-PCDNA3.1真核表达载体的鉴定 | 第32-34页 |
| 2.4 讨论 | 第34-35页 |
| 2.4.1 GFP-PCDNA3.1真核表达载体的构建 | 第34页 |
| 2.4.2 C-MPL-PCDNA3.1真核表达载体的构建 | 第34-35页 |
| 2.5 结论 | 第35-36页 |
| 第三章 双荧光素酶检测系统的构建和应用 | 第36-55页 |
| 3.1 实验材料和器材 | 第36-37页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 3.1.2 实验器材 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-40页 |
| 3.2.1 NIH-3T3细胞培养 | 第37-38页 |
| 3.2.2 NIH 3T3细胞转染条件的摸索 | 第38页 |
| 3.2.3 双荧光素酶检测系统的构建 | 第38-40页 |
| 3.2.4 双荧光素酶检测系统的应用 | 第40页 |
| 3.3 结果 | 第40-52页 |
| 3.3.1 NIH 3T3细胞转染条件 | 第40-44页 |
| 3.3.2 共转染质粒比例对荧光强度的影响 | 第44-46页 |
| 3.3.3 阳性对照药特比澳浓度对荧光强度的影响 | 第46页 |
| 3.3.4 双荧光素酶检测系统的应用 | 第46-52页 |
| 3.4 讨论 | 第52-54页 |
| 3.4.1 NIH 3T3细胞转染条件的摸索 | 第52-53页 |
| 3.4.2 共转染质粒比例对荧光强度的影响 | 第53页 |
| 3.4.3 阳性对照药特比澳浓度对荧光强度的影响 | 第53-54页 |
| 3.4.4 血小板生成素模拟肽摇瓶培养酵母表达上清粗检 | 第54页 |
| 3.4.5 血小板生成素模拟肽发酵罐初步纯化产物的检测 | 第54页 |
| 3.5 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
