| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 缩略词 | 第9-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-35页 |
| 1.1 水稻耐冷性研究进展 | 第15-31页 |
| 1.1.1 水稻冷害的分类 | 第15-16页 |
| 1.1.2 水稻芽期耐冷QTL及芽期耐冷基因研究进展 | 第16-19页 |
| 1.1.3 植物耐冷机理进展 | 第19-27页 |
| 1.1.4 植物耐冷机制的研究进展 | 第27-30页 |
| 1.1.5 水稻耐冷基因的研究进展 | 第30-31页 |
| 1.2 水稻数量性状基因的定位和克隆 | 第31-33页 |
| 1.3 关联分析在植物数量性状基因研究上的应用 | 第33页 |
| 1.4 本实验的研究目的和意义 | 第33-35页 |
| 第二章 关联分析水稻芽期与孕穗期耐冷性 | 第35-50页 |
| 2.1 材料与方法 | 第35-38页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第35页 |
| 2.1.2 耐冷性鉴定 | 第35-38页 |
| 2.1.3 数据分析和连锁作图 | 第38页 |
| 2.2 结果与分析 | 第38-47页 |
| 2.2.1 籼粳稻低温下表型分析 | 第38-43页 |
| 2.2.2 芽期、孕穗期耐冷QTL分析 | 第43-46页 |
| 2.2.3 增效基因型和减效基因型对种质表型的影响 | 第46-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-50页 |
| 2.3.1 水稻芽期和穗期耐冷QTL检测及其育种潜力 | 第47-48页 |
| 2.3.2 水稻两个亚种耐冷的分化和机制 | 第48-50页 |
| 第三章 水稻孕穗期耐冷基因QCTB4-1-1的功能验证 | 第50-108页 |
| 3.1 材料与方法 | 第50-72页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第50页 |
| 3.1.2 常用试剂及仪器 | 第50-52页 |
| 3.1.3 引物与测序 | 第52-53页 |
| 3.1.4 菌株和载体 | 第53页 |
| 3.1.5 本实验所用的培养基 | 第53-55页 |
| 3.1.6 方法 | 第55-70页 |
| 3.1.7 生物信息学分析 | 第70-72页 |
| 3.2 结果与分析 | 第72-105页 |
| 3.2.1 候选基因qCTB4-1-1在亲本间的差异 | 第73-74页 |
| 3.2.2 候选基因qCTB4-1-1的载体构建、遗传转化 | 第74-75页 |
| 3.2.3 超表达qCTB4-1-1植株的检测 | 第75-76页 |
| 3.2.4 孕穗期不同耐冷鉴定方法对参试材料的影响 | 第76-78页 |
| 3.2.5 三种孕穗期耐冷鉴定方法 | 第78页 |
| 3.2.6 qCTB4-1-1转基因系孕穗期耐冷性鉴定 | 第78-84页 |
| 3.2.7 造成植株结实率和单株产量差异的因素 | 第84-88页 |
| 3.2.8 qCTB4-1-1过表达植株发芽期耐冷性 | 第88-89页 |
| 3.2.9 qCTB4-1-1过表达植株低温胁迫下细胞膜透性分析 | 第89-91页 |
| 3.2.10 qCTB4-1-1过表达植株低温胁迫下丙二醛含量分析 | 第91-92页 |
| 3.2.11 qCTB4-1-1过表达植株低温胁迫下脯氨酸含量分析 | 第92-94页 |
| 3.2.12 qCTB4-1-1及相关基因的表达分析 | 第94-96页 |
| 3.2.13 qCTB4-1-1的组织表达 | 第96-98页 |
| 3.2.14 qCTB4-1-1的亚细胞定位 | 第98-99页 |
| 3.2.15 qCTB4-1-1蛋白同源性分析 | 第99-101页 |
| 3.2.16 qCTB4-1-1的单倍型分析 | 第101-105页 |
| 3.3 讨论与小结 | 第105-108页 |
| 3.3.1 qCTB4-1-1能够在孕穗期起耐冷作用 | 第105页 |
| 3.3.2 qCTB4-1-1影响生理生化活动和减少最终产量的损失 | 第105-106页 |
| 3.3.3 表达量低的qCTB4-1-1编码一个膜蛋白 | 第106-107页 |
| 3.3.4 不同材料中与qCTB4-1-1相似的单倍型有较强的孕穗期耐冷性 | 第107-108页 |
| 第四章 水稻孕穗期耐冷基因QCTB4-1-2的克隆与功能验证 | 第108-127页 |
| 4.1 材料与方法 | 第108-110页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第108页 |
| 4.1.2 常用试剂及仪器 | 第108页 |
| 4.1.3 引物与测序 | 第108-109页 |
| 4.1.4 菌株与载体 | 第109页 |
| 4.1.5 本实验所用的培养基 | 第109页 |
| 4.1.6 实验方法 | 第109-110页 |
| 4.2 结果与分析 | 第110-124页 |
| 4.2.1 qCTB4-1-2在亲本与日本晴之间的序列差异 | 第110-111页 |
| 4.2.2 候选基因qCTB4-1-2的载体构建、遗传转化 | 第111-112页 |
| 4.2.3 qCTB4-1-2孕穗期耐冷功能验证 | 第112-117页 |
| 4.2.4 qCTB4-1-2影响产量的因素 | 第117-119页 |
| 4.2.5 qCTB4-1-2影响抗逆相关基因的表达 | 第119-120页 |
| 4.2.6 qCTB4-1-2时空表达模式 | 第120-121页 |
| 4.2.7 qCTB4-1-2的亚细胞定位 | 第121-122页 |
| 4.2.8 qCTB4-1-2过表达植株发芽期耐冷性 | 第122-123页 |
| 4.2.9 qCTB4-1-2的蛋白同源性分析 | 第123-124页 |
| 4.3 小结与讨论 | 第124-127页 |
| 4.3.1 qCTB4-1-2具有孕穗期耐冷功能 | 第124-125页 |
| 4.3.2 qCTB4-1-2启动子含有多个抗逆相关的顺式元件 | 第125页 |
| 4.3.3 qCTB4-1-2在发芽期不具有耐冷能力 | 第125-126页 |
| 4.3.4 qCTB4-1-2编码一个膜蛋白并在真菌和植物中广泛存在 | 第126-127页 |
| 第五章 结论 | 第127-128页 |
| 参考文献 | 第128-145页 |
| 致谢 | 第145-147页 |
| 附录 | 第147-154页 |
| 作者简历 | 第154页 |
