| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第10-22页 |
| 1.1 介孔硅纳米粒子的合成 | 第10-18页 |
| 1.1.1 反应动力学 | 第11-12页 |
| 1.1.2 硅源的选择 | 第12页 |
| 1.1.3 表面活性剂的选择 | 第12页 |
| 1.1.4 pH值的影响 | 第12-14页 |
| 1.1.5 表面活性剂的移除 | 第14-15页 |
| 1.1.6 MSN的分散性 | 第15页 |
| 1.1.7 纳米通道的方向 | 第15-16页 |
| 1.1.8 孔的扩展 | 第16页 |
| 1.1.9 改进的St?ber法 | 第16-17页 |
| 1.1.10 MSNs的功能化修饰 | 第17-18页 |
| 1.2 MSNS的应用 | 第18-19页 |
| 1.3 总结和展望 | 第19-20页 |
| 1.4 本论文的研究意义及主要内容 | 第20-22页 |
| 2 肝素化介孔硅纳米粒子的制备及表征 | 第22-32页 |
| 2.1 实验部分 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第23页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.3 FITC-APTES的合成 | 第24页 |
| 2.1.4 氨基化介孔硅纳米粒子（MSNs-NH2）的合成 | 第24页 |
| 2.1.5 MSNs-HP和FITC标记的MSNs-HP的合成 | 第24页 |
| 2.2 测试与表征 | 第24-26页 |
| 2.2.1 扫描电子显微镜 | 第24-25页 |
| 2.2.2 透射电子显微镜 | 第25页 |
| 2.2.3 激光共聚焦显微镜 | 第25页 |
| 2.2.4 氮吸附脱附曲线、比表面积及孔径分布测试 | 第25页 |
| 2.2.5 粒径分布及Zeta电位测定 | 第25页 |
| 2.2.6 紫外-可见分光光度法测定肝素在MSNs-NH2上的结合量 | 第25-26页 |
| 2.3 试验结果与分析 | 第26-30页 |
| 2.3.1 SEM与TEM分析 | 第26页 |
| 2.3.2 激光共聚焦显微镜测试与分析 | 第26-27页 |
| 2.3.3 氮吸附-脱附曲线分析 | 第27-28页 |
| 2.3.4 粒径分布及Zeta电位分析 | 第28-29页 |
| 2.3.5 HP在MSNs-NH2上结合量的测定与分析 | 第29-30页 |
| 2.4 本章小结 | 第30-32页 |
| 3 肝素化介孔硅纳米粒子对阿霉素的负载及抗肿瘤活性研究 | 第32-48页 |
| 3.1 实验部分 | 第32-37页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第32-33页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第33页 |
| 3.1.3 DOX在MSNs-HP上的负载 | 第33-34页 |
| 3.1.4 DOX在MSNs-HP上的释放 | 第34页 |
| 3.1.5 细胞培养 | 第34页 |
| 3.1.6 FITC-标记的MSNs-HP被Hela细胞的摄取 | 第34-35页 |
| 3.1.7 H22移植肿瘤模型的确立 | 第35页 |
| 3.1.8 动物分组和处理 | 第35页 |
| 3.1.9 组织形态学测定 | 第35页 |
| 3.1.10 western blot检测 | 第35-36页 |
| 3.1.11 血液生化指标和免疫功能分析 | 第36页 |
| 3.1.12 鸡绒毛尿囊膜试验（CAM） | 第36-37页 |
| 3.1.13 统计学分析 | 第37页 |
| 3.2 试验结果与分析 | 第37-47页 |
| 3.2.1 DOX在MSNs-HP上的负载 | 第37-39页 |
| 3.2.2 DOX在MSNs-HP上的释放 | 第39页 |
| 3.2.3 细胞摄取实验 | 第39-40页 |
| 3.2.4 肿瘤抑制分析 | 第40-42页 |
| 3.2.5 组织形态学测定 | 第42-43页 |
| 3.2.6 肿瘤血管生成分析 | 第43-44页 |
| 3.2.7 鸡绒毛尿囊膜试验 | 第44-46页 |
| 3.2.8 安全性评价 | 第46-47页 |
| 3.3 本章小结 | 第47-48页 |
| 总结与展望 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 攻读学位期间已完成工作 | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
