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QMA对H2O2诱导PC12细胞凋亡的保护作用研究

摘要第4-5页
ABSTRACT第5-6页
前言第10-14页
    参考文献第11-14页
第一部分 QMA对H_2O_2诱发PC12细胞的损伤保护第14-32页
    1 实验材料第15-17页
        1.1 试剂与溶液第15-16页
        1.2 主要仪器第16-17页
    2 实验方法第17-20页
        2.1 PC12细胞培养第17页
        2.2 H_2O_2对PC12细胞的损伤作用第17-18页
        2.3 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞损害的保护第18页
        2.4 QMA对H_2O_2诱发的PC12细胞的形态变化的影响第18页
        2.5 吖啶橙、溴化乙锭双染法进行细胞的形态特征观察第18-19页
        2.6 细胞线粒体膜电位的测定第19页
        2.7 ROS含量变化的影响第19-20页
    3 统计学处理第20页
    4 结果第20-27页
        4.1 H_2O_2诱导PC12细胞的损伤作用第20页
        4.2 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞损伤性保护第20-21页
        4.3 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞形态变化影响第21-22页
        4.4 QMA对H_2O_2诱发PC12的细胞凋亡形态变化的影响第22-23页
        4.5 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞线粒体膜电位变化的影响第23-25页
        4.6 QMA对H_2O_2诱发的PC12细胞ROS含量变化的影响第25-27页
    5 讨论第27-29页
    6 小结第29页
        6.1 终浓度为 500μmol/L H_2O_2与PC12细胞作用 24h,可显著性介导细胞损伤第29页
        6.2 QMA对H_2O_2介导的PC12的细胞氧化损害表现出显著的保护能力第29页
    参考文献第29-32页
第二部分 QMA对H_2O_2诱发PC12细胞内CASPASE-3 含量变化的影响第32-44页
    1 实验材料第33-35页
        1.1 试剂与溶液第33-35页
        1.2 主要仪器第35页
    2 实验方法第35-39页
        2.1 免疫荧光法测定活性caspase-3 的表达情况第35-36页
        2.2 Western Blot法测定活化caspase-3 的表达第36-39页
    3 统计学处理第39页
    4 结果第39-41页
        4.1 免疫荧光法测定活化状态的caspase-3 表达情况第39-40页
        4.2 QMA对H_2O_2诱发的活化状态的caspase-3 表达的影响第40-41页
    5 讨论第41-42页
    6 小结第42页
    参考文献第42-44页
第三部分 综述第44-56页
    1、脑组织中的ROS第45-46页
    2、氧化应激与AD相关因子探讨第46页
        (1)NO第46页
        (2)H_2O_2第46页
        (3)SOD第46页
    3、氧化应激与其他几种假说的关系第46-48页
        (1)Aβ与氧化应激第47页
        (2)炎症与氧化应激第47页
        (3)tau蛋白与氧化应激第47-48页
    4、抗氧化药物研究第48-51页
        (1)白藜芦醇第48-49页
        (2)维生素E第49页
        (3)褪黑素第49-50页
        (4)槲皮素第50-51页
        (5)磷酸二酯酶类抑制剂第51页
    5、展望第51页
    参考文献第51-56页
英文缩略词表(ABBREVIATIONS AND ACRONYMS)第56-58页
致谢第58-59页

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