摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
前言 | 第10-14页 |
参考文献 | 第11-14页 |
第一部分 QMA对H_2O_2诱发PC12细胞的损伤保护 | 第14-32页 |
1 实验材料 | 第15-17页 |
1.1 试剂与溶液 | 第15-16页 |
1.2 主要仪器 | 第16-17页 |
2 实验方法 | 第17-20页 |
2.1 PC12细胞培养 | 第17页 |
2.2 H_2O_2对PC12细胞的损伤作用 | 第17-18页 |
2.3 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞损害的保护 | 第18页 |
2.4 QMA对H_2O_2诱发的PC12细胞的形态变化的影响 | 第18页 |
2.5 吖啶橙、溴化乙锭双染法进行细胞的形态特征观察 | 第18-19页 |
2.6 细胞线粒体膜电位的测定 | 第19页 |
2.7 ROS含量变化的影响 | 第19-20页 |
3 统计学处理 | 第20页 |
4 结果 | 第20-27页 |
4.1 H_2O_2诱导PC12细胞的损伤作用 | 第20页 |
4.2 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞损伤性保护 | 第20-21页 |
4.3 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞形态变化影响 | 第21-22页 |
4.4 QMA对H_2O_2诱发PC12的细胞凋亡形态变化的影响 | 第22-23页 |
4.5 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞线粒体膜电位变化的影响 | 第23-25页 |
4.6 QMA对H_2O_2诱发的PC12细胞ROS含量变化的影响 | 第25-27页 |
5 讨论 | 第27-29页 |
6 小结 | 第29页 |
6.1 终浓度为 500μmol/L H_2O_2与PC12细胞作用 24h,可显著性介导细胞损伤 | 第29页 |
6.2 QMA对H_2O_2介导的PC12的细胞氧化损害表现出显著的保护能力 | 第29页 |
参考文献 | 第29-32页 |
第二部分 QMA对H_2O_2诱发PC12细胞内CASPASE-3 含量变化的影响 | 第32-44页 |
1 实验材料 | 第33-35页 |
1.1 试剂与溶液 | 第33-35页 |
1.2 主要仪器 | 第35页 |
2 实验方法 | 第35-39页 |
2.1 免疫荧光法测定活性caspase-3 的表达情况 | 第35-36页 |
2.2 Western Blot法测定活化caspase-3 的表达 | 第36-39页 |
3 统计学处理 | 第39页 |
4 结果 | 第39-41页 |
4.1 免疫荧光法测定活化状态的caspase-3 表达情况 | 第39-40页 |
4.2 QMA对H_2O_2诱发的活化状态的caspase-3 表达的影响 | 第40-41页 |
5 讨论 | 第41-42页 |
6 小结 | 第42页 |
参考文献 | 第42-44页 |
第三部分 综述 | 第44-56页 |
1、脑组织中的ROS | 第45-46页 |
2、氧化应激与AD相关因子探讨 | 第46页 |
(1)NO | 第46页 |
(2)H_2O_2 | 第46页 |
(3)SOD | 第46页 |
3、氧化应激与其他几种假说的关系 | 第46-48页 |
(1)Aβ与氧化应激 | 第47页 |
(2)炎症与氧化应激 | 第47页 |
(3)tau蛋白与氧化应激 | 第47-48页 |
4、抗氧化药物研究 | 第48-51页 |
(1)白藜芦醇 | 第48-49页 |
(2)维生素E | 第49页 |
(3)褪黑素 | 第49-50页 |
(4)槲皮素 | 第50-51页 |
(5)磷酸二酯酶类抑制剂 | 第51页 |
5、展望 | 第51页 |
参考文献 | 第51-56页 |
英文缩略词表(ABBREVIATIONS AND ACRONYMS) | 第56-58页 |
致谢 | 第58-59页 |