| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 前言 | 第10-14页 |
| 参考文献 | 第11-14页 |
| 第一部分 QMA对H_2O_2诱发PC12细胞的损伤保护 | 第14-32页 |
| 1 实验材料 | 第15-17页 |
| 1.1 试剂与溶液 | 第15-16页 |
| 1.2 主要仪器 | 第16-17页 |
| 2 实验方法 | 第17-20页 |
| 2.1 PC12细胞培养 | 第17页 |
| 2.2 H_2O_2对PC12细胞的损伤作用 | 第17-18页 |
| 2.3 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞损害的保护 | 第18页 |
| 2.4 QMA对H_2O_2诱发的PC12细胞的形态变化的影响 | 第18页 |
| 2.5 吖啶橙、溴化乙锭双染法进行细胞的形态特征观察 | 第18-19页 |
| 2.6 细胞线粒体膜电位的测定 | 第19页 |
| 2.7 ROS含量变化的影响 | 第19-20页 |
| 3 统计学处理 | 第20页 |
| 4 结果 | 第20-27页 |
| 4.1 H_2O_2诱导PC12细胞的损伤作用 | 第20页 |
| 4.2 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞损伤性保护 | 第20-21页 |
| 4.3 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞形态变化影响 | 第21-22页 |
| 4.4 QMA对H_2O_2诱发PC12的细胞凋亡形态变化的影响 | 第22-23页 |
| 4.5 QMA对H_2O_2诱发的PC12的细胞线粒体膜电位变化的影响 | 第23-25页 |
| 4.6 QMA对H_2O_2诱发的PC12细胞ROS含量变化的影响 | 第25-27页 |
| 5 讨论 | 第27-29页 |
| 6 小结 | 第29页 |
| 6.1 终浓度为 500μmol/L H_2O_2与PC12细胞作用 24h，可显著性介导细胞损伤 | 第29页 |
| 6.2 QMA对H_2O_2介导的PC12的细胞氧化损害表现出显著的保护能力 | 第29页 |
| 参考文献 | 第29-32页 |
| 第二部分 QMA对H_2O_2诱发PC12细胞内CASPASE-3 含量变化的影响 | 第32-44页 |
| 1 实验材料 | 第33-35页 |
| 1.1 试剂与溶液 | 第33-35页 |
| 1.2 主要仪器 | 第35页 |
| 2 实验方法 | 第35-39页 |
| 2.1 免疫荧光法测定活性caspase-3 的表达情况 | 第35-36页 |
| 2.2 Western Blot法测定活化caspase-3 的表达 | 第36-39页 |
| 3 统计学处理 | 第39页 |
| 4 结果 | 第39-41页 |
| 4.1 免疫荧光法测定活化状态的caspase-3 表达情况 | 第39-40页 |
| 4.2 QMA对H_2O_2诱发的活化状态的caspase-3 表达的影响 | 第40-41页 |
| 5 讨论 | 第41-42页 |
| 6 小结 | 第42页 |
| 参考文献 | 第42-44页 |
| 第三部分 综述 | 第44-56页 |
| 1、脑组织中的ROS | 第45-46页 |
| 2、氧化应激与AD相关因子探讨 | 第46页 |
| （1）NO | 第46页 |
| （2）H_2O_2 | 第46页 |
| （3）SOD | 第46页 |
| 3、氧化应激与其他几种假说的关系 | 第46-48页 |
| （1）Aβ与氧化应激 | 第47页 |
| （2）炎症与氧化应激 | 第47页 |
| （3）tau蛋白与氧化应激 | 第47-48页 |
| 4、抗氧化药物研究 | 第48-51页 |
| （1）白藜芦醇 | 第48-49页 |
| （2）维生素E | 第49页 |
| （3）褪黑素 | 第49-50页 |
| （4）槲皮素 | 第50-51页 |
| （5）磷酸二酯酶类抑制剂 | 第51页 |
| 5、展望 | 第51页 |
| 参考文献 | 第51-56页 |
| 英文缩略词表（ABBREVIATIONS AND ACRONYMS） | 第56-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
