摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
1 绪论 | 第11-23页 |
1.1 DHA | 第11-17页 |
1.1.1 DHA的结构与性质 | 第11-12页 |
1.1.2 DHA的来源 | 第12-13页 |
1.1.3 DHA的生理功能 | 第13-16页 |
1.1.4 DHA的应用 | 第16-17页 |
1.2 微生物发酵生产DHA的研究进展 | 第17-21页 |
1.2.1 裂壶藻的研究 | 第17-18页 |
1.2.2 微生物中DHA的合成途径 | 第18-20页 |
1.2.3 微生物的诱变育种技术研究 | 第20-21页 |
1.2.4 产DHA的发酵工艺的优化 | 第21页 |
1.2.5 多不饱和脂肪酸的检测 | 第21页 |
1.3 本研究的意义和内容 | 第21-23页 |
1.3.1 研究意义 | 第21-22页 |
1.3.2 研究内容 | 第22-23页 |
2 高产DHA裂壶藻突变株的选育 | 第23-34页 |
2.1 材料与方法 | 第23-27页 |
2.1.1 材料与试剂 | 第23-24页 |
2.1.2 主要仪器设备 | 第24-25页 |
2.1.3 实验方法 | 第25-27页 |
2.2 结果与分析 | 第27-32页 |
2.2.1 等离子体注入对裂壶藻ATCC20888菌株存活率的影响 | 第27-28页 |
2.2.2 初筛 | 第28页 |
2.2.3 摇瓶复筛 | 第28-30页 |
2.2.4 突变株遗传稳定性测试 | 第30-31页 |
2.2.5 突变株脂肪酸组成分析 | 第31-32页 |
2.3 本章小结 | 第32-34页 |
3 裂壶藻及其突变株的生长发育和油脂形成的过程研究 | 第34-41页 |
3.1 材料与方法 | 第34-35页 |
3.1.1 材料与试剂 | 第34页 |
3.1.2 仪器与设备 | 第34页 |
3.1.3 实验方法 | 第34-35页 |
3.2 结果与分析 | 第35-39页 |
3.2.1 光学显微观察 | 第35-38页 |
3.2.2 超薄切片透射电镜观察 | 第38-39页 |
3.3 本章小结 | 第39-41页 |
4 裂壶藻突变株海盐培养基的响应面优化 | 第41-49页 |
4.1 材料与方法 | 第41-42页 |
4.1.1 材料与试剂 | 第41页 |
4.1.2 仪器与设备 | 第41-42页 |
4.1.3 实验方法 | 第42页 |
4.1.4 试验设计 | 第42页 |
4.2 结果与分析 | 第42-48页 |
4.2.1 单因素试验结果与分析 | 第42-45页 |
4.2.2 响应面试验结果与分析 | 第45-48页 |
4.3 本章小结 | 第48-49页 |
5 裂壶藻突变株发酵产DHA藻油的动力学模型及补糖工艺研究 | 第49-59页 |
5.1 材料与方法 | 第49-51页 |
5.1.1 材料与试剂 | 第49-50页 |
5.1.2 仪器与设备 | 第50页 |
5.1.3 实验方法 | 第50-51页 |
5.1.4 数据处理 | 第51页 |
5.2 结果与分析 | 第51-58页 |
5.2.1 裂壶藻突变株发酵过程 | 第51-52页 |
5.2.2 裂壶藻突变株生长模型 | 第52-53页 |
5.2.3 产物形成模型 | 第53-54页 |
5.2.4 底物消耗模型 | 第54-55页 |
5.2.5 模型验证 | 第55-56页 |
5.2.6 裂壶藻突变株补糖发酵研究 | 第56-58页 |
5.3 本章小结 | 第58-59页 |
6 裂壶藻突变株产DHA藻油中脂肪酸的GC-MS检测法 | 第59-66页 |
6.1 材料与方法 | 第59-60页 |
6.1.1 材料与试剂 | 第59页 |
6.1.2 仪器与设备 | 第59页 |
6.1.3 实验方法 | 第59-60页 |
6.2 结果与分析 | 第60-65页 |
6.2.1 DHA藻油用三种不同的甲酯化方法的结果 | 第60-64页 |
6.2.2 氢氧化钠-甲醇法甲酯化温度的优选 | 第64-65页 |
6.3 本章小结 | 第65-66页 |
7 结论与展望 | 第66-69页 |
7.1 结论 | 第66-67页 |
7.2 创新之处 | 第67页 |
7.3 展望 | 第67-69页 |
参考文献 | 第69-76页 |
致谢 | 第76-77页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第77页 |