| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第11-28页 |
| 1.1 光致电化学概述 | 第11-13页 |
| 1.1.1 光致电化学概述 | 第11-12页 |
| 1.1.2 光致电化学体系的组成 | 第12页 |
| 1.1.3 光致电化学的发展前景 | 第12-13页 |
| 1.2 光致电化学材料概述 | 第13-18页 |
| 1.2.1 光致电化学材料概述 | 第13-14页 |
| 1.2.2 光致电化学材料的制备方法 | 第14页 |
| 1.2.2.1 激光加热蒸发法 | 第14页 |
| 1.2.2.2 水热合成法 | 第14页 |
| 1.2.2.3 溶胶-凝胶法 | 第14页 |
| 1.2.2.4 微波合成法 | 第14页 |
| 1.2.3 光致电化学材料的应用 | 第14-18页 |
| 1.2.3.1 无机半导体材料的应用 | 第15-18页 |
| 1.2.3.2 有机光电活性材料的应用 | 第18页 |
| 1.3 光致电化学传感器 | 第18-24页 |
| 1.3.1 光致电化学传感器概述 | 第18-19页 |
| 1.3.2 光致电化学传感器的分类 | 第19-21页 |
| 1.3.2.1 电位型传感器 | 第20页 |
| 1.3.2.2 电流型传感器 | 第20-21页 |
| 1.3.3 光致电化学传感器的应用 | 第21-24页 |
| 1.3.3.1 光电阳极传感器的应用 | 第21-23页 |
| 1.3.3.2 光电阴极传感器的应用 | 第23-24页 |
| 1.4 阴极光电材料BiOI的简介及应用 | 第24-25页 |
| 1.5 阴极光电材料CuInS_2的简介及应用 | 第25-26页 |
| 1.6 本课题的研究意义与内容 | 第26-28页 |
| 第二章 基于双增强效果的阴极光致电化学传感器检测凝血酶的研究 | 第28-43页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验部分 | 第29-31页 |
| 2.2.1 仪器和试剂 | 第29-30页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第30-31页 |
| 2.2.2.1 BiOI纳米片的合成 | 第30页 |
| 2.2.2.2 金纳米颗粒的制备 | 第30页 |
| 2.2.2.3 将AuNPs连接到凝血酶适体(DNA_2)上 | 第30页 |
| 2.2.2.4 光致电化学适体传感器的制备 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第31-42页 |
| 2.3.1 实验原理 | 第31-32页 |
| 2.3.2 不同基底及材料扫描电镜和透射电镜的表征 | 第32-33页 |
| 2.3.3 BiOI纳米片的X-射线衍射表征图 | 第33-34页 |
| 2.3.4 BiOI纳米片的可见吸收光谱表征图 | 第34页 |
| 2.3.5 在最优偏压-0.1V下,对BiOI纳米片价带导带的检测 | 第34-35页 |
| 2.3.6 电子转移过程研究 | 第35页 |
| 2.3.7 光致电化学传感器光电流的检测 | 第35-36页 |
| 2.3.8 修饰电极的阻抗表征 | 第36-37页 |
| 2.3.9 对heminG四联体紫外可见吸收光谱及圆二色谱的表征 | 第37-38页 |
| 2.3.10 对hemin适体DNA1的浓度、hemin的浓度、凝血酶的孵化时间及偏压的优化 | 第38-39页 |
| 2.3.11 对凝血酶浓度梯度的检测及线性表征 | 第39-41页 |
| 2.3.12 对凝血酶特异性的检测 | 第41页 |
| 2.3.13 实际样品检测 | 第41-42页 |
| 2.4 本章结论 | 第42-43页 |
| 第三章 基于双增强效果的阴极光致电化学传感器检测Pb~(2+)的研究 | 第43-55页 |
| 3.1 引言 | 第43-44页 |
| 3.2 实验部分 | 第44-45页 |
| 3.2.1 仪器和试剂 | 第44-45页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第45页 |
| 3.2.2.1 BiOI纳米片的合成 | 第45页 |
| 3.2.2.2 金纳米颗粒的制备 | 第45页 |
| 3.2.2.3 将AuNPs连接到铅离子适体(DNA_2)上 | 第45页 |
| 3.2.2.4 光致电化学适体传感器的制备 | 第45页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第45-54页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第45-47页 |
| 3.3.2 不同基底及材料的扫描电镜表征 | 第47页 |
| 3.3.3 Fc还原电位的测定 | 第47-48页 |
| 3.3.4 电子转移过程研究 | 第48页 |
| 3.3.5 光致电化学传感器光电流的检测 | 第48-49页 |
| 3.3.6 修饰电极的阻抗表征 | 第49-50页 |
| 3.3.7 对Fc修饰的DNA1的浓度、Pb~(2+)的孵化时间及偏压的优化 | 第50-51页 |
| 3.3.8 对Pb~(2+)浓度梯度的检测及线性表征 | 第51-52页 |
| 3.3.9 对铅离子特异性的检测 | 第52-53页 |
| 3.3.10 实际样品检测 | 第53-54页 |
| 3.4 本章结论 | 第54-55页 |
| 第四章 基于酶切扩增效果的阴极光致电化学传感器检测MicroRNAs的研究 | 第55-68页 |
| 4.1 引言 | 第55-56页 |
| 4.2 实验部分 | 第56-58页 |
| 4.2.1 试剂和仪器 | 第56-57页 |
| 4.2.2 实验步骤 | 第57-58页 |
| 4.2.2.1 CuInS_2微花的合成 | 第57页 |
| 4.2.2.2 阴极生物传感电极的构建 | 第57-58页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第58-67页 |
| 4.3.1 实验原理 | 第58-59页 |
| 4.3.2 CuInS_2微花的扫描电镜表征 | 第59-60页 |
| 4.3.3 CuInS_2微花的XRD图像表征 | 第60页 |
| 4.3.4 光致电化学传感器光电流的检测 | 第60-61页 |
| 4.3.5 修饰电极的阻抗表征 | 第61-62页 |
| 4.3.6 酶切反应的聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)表征 | 第62-63页 |
| 4.3.7 对核酸外切酶III(ExoIII)浓度的优化 | 第63-64页 |
| 4.3.8 对TATA绑定蛋白(TBP)浓度的优化 | 第64-65页 |
| 4.3.9 对miR-21浓度梯度的检测及线性表征 | 第65-66页 |
| 4.3.10 对miR-21特异性的检测 | 第66-67页 |
| 4.3.11 实际样品检测 | 第67页 |
| 4.4 本章结论 | 第67-68页 |
| 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文目录 | 第76-77页 |
