| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩写词表 | 第11-12页 |
| 第一部分 熊果酸和齐墩果酸对UGTs重组酶活性的影响 | 第12-42页 |
| 第1章 引言 | 第12-15页 |
| 第2章 材料和方法 | 第15-26页 |
| 2.1 材料 | 第15-16页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第15页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第15-16页 |
| 2.2 方法 | 第16-26页 |
| 2.2.1 溶液的配制 | 第16-17页 |
| 2.2.2 反应体系和检测条件 | 第17-20页 |
| 2.2.3 UA和OA对人体常见的12种UGT酶的抑制作用 | 第20页 |
| 2.2.4 UA对UGT1A3和UGT1A4的抑制动力学参数和抑制机制 | 第20-22页 |
| 2.2.5 OA对 UGT1A3 和 UGT1A4 的抑制动力学参数和抑制机制 | 第22页 |
| 2.2.6 动力学参数求算及体外体内推算方法 | 第22-26页 |
| 第3章 结果 | 第26-39页 |
| 3.1 4-MUG的HPLC检测方法学评价结果 | 第26-28页 |
| 3.2 TFP-G的LC-MS检测方法学评价结果 | 第28-31页 |
| 3.3 UA和OA对12种常见的UGTs酶抑制作用影响的结果 | 第31-33页 |
| 3.4 UA对UGT1A3和UGT1A4抑制动力学参数IC_(50)和K_i值的研究结果 | 第33-35页 |
| 3.5 OA对UGT1A3和UGT1A4抑制动力学参数IC_(50)和K_i值的研究结果 | 第35-37页 |
| 3.6 UA和OA对UGT1A3和UGT1A4的体内药物药物相互作用的预测 | 第37-39页 |
| 第4章 讨论 | 第39-42页 |
| 第二部分 熊果酸和齐墩果酸对HepG2细胞中UGTs酶表达的影响 | 第42-63页 |
| 第1章 引言 | 第42-43页 |
| 第2章 材料和方法 | 第43-51页 |
| 2.1 材料 | 第43-44页 |
| 2.1.1 主要仪器设备 | 第43页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第43-44页 |
| 2.2.3 细胞株 | 第44页 |
| 2.2.4 细胞培养条件 | 第44页 |
| 2.3 方法 | 第44-51页 |
| 2.3.1 溶液的配制 | 第44-45页 |
| 2.3.2 HepG2细胞培养 | 第45-46页 |
| 2.3.3 HepG2细胞生长曲线的绘制 | 第46页 |
| 2.3.4 药物对HepG2细胞毒性测试 | 第46页 |
| 2.3.5 引物设计 | 第46-47页 |
| 2.3.6 UA和OA对UGTs酶表达的影响 | 第47-49页 |
| 2.3.7 统计学处理 | 第49-51页 |
| 第3章 结果 | 第51-60页 |
| 3.1 HepG2细胞培养及生长曲线 | 第51-52页 |
| 3.2 UA和OA对HepG2细胞毒性结果 | 第52-54页 |
| 3.3 总RNA完整性测试 | 第54页 |
| 3.4 溶解曲线法检测各UGTs酶mRNA特异性 | 第54-55页 |
| 3.5 UA对UGTs酶表达的影响 | 第55-57页 |
| 3.6 OA对UGTs酶表达的影响 | 第57-60页 |
| 第4章 讨论 | 第60-62页 |
| 第5章 结论与展望 | 第62-63页 |
| 5.1 结论 | 第62页 |
| 5.2 展望 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第70-71页 |
| 综述 | 第71-80页 |
| 参考文献 | 第77-80页 |
