| 摘要 | 第3-5页 |
| Summary | 第5-6页 |
| 缩略词英汉对照表 | 第10-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-23页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 DEXD/H盒解旋酶家族的结构与功能 | 第13-21页 |
| 1.2.1 DEXD/H盒解旋酶家族的基本结构 | 第14页 |
| 1.2.2 RLR家族识别dsRNA的机制 | 第14-19页 |
| 1.2.3 其他DEXD/H盒解旋酶识别dsRNA机制 | 第19-21页 |
| 1.3 DHX15抗病毒免疫研究现状与意义 | 第21-23页 |
| 第二章 猪DHX15基因的克隆及序列分析 | 第23-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-25页 |
| 2.1.1 实验动物及试剂 | 第23页 |
| 2.1.2 引物设计与合成 | 第23-24页 |
| 2.1.3 猪外周血单核细胞（PBMC）的分离 | 第24页 |
| 2.1.4 总RNA的提取及反转录 | 第24页 |
| 2.1.5 PCR扩增猪DHX15目的片段 | 第24-25页 |
| 2.1.6 猪DHX15克隆载体的构建 | 第25页 |
| 2.1.7 猪DHX15序列分析及结构预测 | 第25页 |
| 2.2 结果与分析 | 第25-29页 |
| 2.2.1 猪DHX15基因PCR扩增结果 | 第25-26页 |
| 2.2.2 目的序列及结构分析 | 第26-29页 |
| 2.3 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 猪DHX15组织差异和亚细胞定位研究 | 第31-38页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-35页 |
| 3.1.1 实验动物、试剂及仪器 | 第31-32页 |
| 3.1.2 引物设计与合成 | 第32页 |
| 3.1.3 猪不同组织总RNA的提取与反转录 | 第32-33页 |
| 3.1.4 猪DHX15组织差异分析 | 第33-34页 |
| 3.1.5 猪DHX15亚细胞定位分析 | 第34-35页 |
| 3.2 结果与分析 | 第35-37页 |
| 3.2.1 猪DHX15的组织表达差异 | 第35页 |
| 3.2.2 DHX15亚细胞定位 | 第35-37页 |
| 3.3 讨论 | 第37-38页 |
| 第四章 猪DHX15在诱导Ⅰ型IFNs中的作用 | 第38-57页 |
| 4.1 材料与方法 | 第38-44页 |
| 4.1.1 细胞、质粒与试剂 | 第38-39页 |
| 4.1.2 引物设计与合成 | 第39页 |
| 4.1.3 真核表达载体的构建 | 第39-40页 |
| 4.1.4 真核表达载体表达水平鉴定 | 第40-41页 |
| 4.1.5 过表达猪DHX15对干扰素-β产生的影响分析 | 第41页 |
| 4.1.6 敲降猪DHX15表达对干扰素-β作用产生的分析 | 第41-43页 |
| 4.1.7 猪DHX15关键结构域的功能作用分析 | 第43页 |
| 4.1.8 猪DHX15与关键接头分子VⅠSA和MⅠTA的作用关系 | 第43-44页 |
| 4.2 结果与分析 | 第44-53页 |
| 4.2.1 真核表达质粒的构建与鉴定 | 第44-46页 |
| 4.2.2 过表达猪DHX15对ⅠFN-β产生的影响作用 | 第46页 |
| 4.2.3 敲降猪DHX15表达对ⅠFN-β作用 | 第46-49页 |
| 4.2.4 猪DHX15关键功能结构域的功能分析 | 第49-50页 |
| 4.2.5 猪DHX15通过VⅠSA-ⅠRF3/NF-κB信号轴介导ⅠFN-β的产生 | 第50-52页 |
| 4.2.6 猪DHX15通过MⅠTA增强ⅠRF3/NF-κB介导的ⅠFN-β的产生 | 第52-53页 |
| 4.3 讨论 | 第53-57页 |
| 第五章 全文结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 致谢 | 第66-68页 |
| 作者简介 | 第68-69页 |
| 导师简介 | 第69-70页 |
