| 致谢 | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 1 引言 | 第23-45页 |
| 1.1 PCP的性质及其污染特性 | 第24-26页 |
| 1.1.1 PCP及其它氯酚化合物的理化性质 | 第24-25页 |
| 1.1.2 PCP环境污染及其危害 | 第25-26页 |
| 1.2 PCP在土壤环境中的迁移转化 | 第26-33页 |
| 1.2.1 PCP及其氯酚的物理迁移过程 | 第27-28页 |
| 1.2.2 PCP及其氯酚的化学转化过程 | 第28-30页 |
| 1.2.3 PCP及其氯酚的生物降解过程 | 第30-33页 |
| 1.3 厌氧条件下PCP的还原脱氯过程 | 第33-39页 |
| 1.3.1 还原脱氯微生物种群 | 第33-35页 |
| 1.3.2 微生物的还原脱卤酶基因 | 第35-37页 |
| 1.3.3 影响PCP还原脱氯的环境因素 | 第37-39页 |
| 1.4 微生物生物多样性测定 | 第39-41页 |
| 1.4.1 以生物化学特性为基础的测定方法 | 第39-40页 |
| 1.4.2 以分子生物学技术为基础的测定方法 | 第40-41页 |
| 1.5 论文研究目标和技术路线 | 第41-45页 |
| 1.5.1 论文研究目标 | 第41-42页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第42-43页 |
| 1.5.3 技术路线 | 第43-45页 |
| 2 铁还原菌C. beijerinckii Z介导的Fe(Ⅲ)还原及其偶联PCP脱氯研究 | 第45-69页 |
| 2.1 材料和方法 | 第46-52页 |
| 2.1.1 供试土壤 | 第46-47页 |
| 2.1.2. 厌氧培养条件下不同碳源对水稻土中Fe(Ⅲ)还原菌铁还原能力的影响 | 第47页 |
| 2.1.3 铁还原菌的富集和分离 | 第47-48页 |
| 2.1.4 铁还原菌特性 | 第48-49页 |
| 2.1.5 铁还原率测定 | 第49页 |
| 2.1.6 铁还原偶联PCP脱氯过程研究 | 第49-50页 |
| 2.1.7 泥浆培养试验 | 第50页 |
| 2.1.8 分析方法 | 第50-52页 |
| 2.2 结果与分析 | 第52-62页 |
| 2.2.1 添加不同碳源对水稻土中铁还原率以及微生物群落结构的影响 | 第52-55页 |
| 2.2.2 铁还原菌的分离及其性质 | 第55-57页 |
| 2.2.3 C. beijerinckii strain Z的pH生长范围以及最适pH | 第57-58页 |
| 2.2.4 C. beijerinckii strain Z的最大铁还原量 | 第58页 |
| 2.2.5 C. beijerinckii strain Z对不同铁源的Fe(Ⅲ)还原效率的差异 | 第58-60页 |
| 2.2.6 C. beijerinckii strain Z介导的铁还原偶联PCP还原脱氯 | 第60-61页 |
| 2.2.7 土壤环境中C. beijerinckii strain Z对PCP浓度的承载范围 | 第61-62页 |
| 2.3 讨论 | 第62-66页 |
| 2.3.1 C. beijerinckii strain Z的分离 | 第62-63页 |
| 2.3.2 影响C. beijerinckii strain Z的铁还原率因素 | 第63-64页 |
| 2.3.3 C. beijerinckii strain Z Fe(Ⅲ)还原对PCP还原脱氯的影响 | 第64-66页 |
| 2.4 结论 | 第66-69页 |
| 3 厌氧条件下与土壤多种氧化还原过程耦合的五氯酚的还原脱氯研究 | 第69-107页 |
| 3.1 材料和方法 | 第70-75页 |
| 3.1.1 供试土壤 | 第70-71页 |
| 3.1.2 培养试验 | 第71页 |
| 3.1.3 分析方法 | 第71-74页 |
| 3.1.4 数据分析 | 第74-75页 |
| 3.2 结果与分析 | 第75-99页 |
| 3.2.1 土层剖面基本理化性质 | 第75-76页 |
| 3.2.2 厌氧条件下PCP的还原脱氯过程及其脱氯途径 | 第76-78页 |
| 3.2.3 PCP脱氯过程中碳同位素分馏效应 | 第78-79页 |
| 3.2.4 厌氧培养过程中不同环境因子氧化还原动力学变化 | 第79-92页 |
| 3.2.5 厌氧培养条件下的电子传递流向 | 第92-93页 |
| 3.2.6 不同环境因子的Pearson相关关系 | 第93-95页 |
| 3.2.7 微生物群落与环境因子的相互关系 | 第95-98页 |
| 3.2.8 厌氧转化过程中的主要微生物种群 | 第98-99页 |
| 3.3 讨论 | 第99-104页 |
| 3.3.1 红树林土壤的PCP还原脱氯能力分析 | 第99-101页 |
| 3.3.2 厌氧条件下土壤中不同氧化还原过程反应排序 | 第101-102页 |
| 3.3.3 Fe(Ⅲ)还原偶联PCP还原脱氯过程 | 第102-103页 |
| 3.3.4 PCP以及乙酸钠对土壤其他生物化学过程的影响 | 第103-104页 |
| 3.4 结论 | 第104-107页 |
| 4 五氯酚还原脱氯过程中土壤微生物群落结构演变 | 第107-129页 |
| 4.1 材料和方法 | 第108页 |
| 4.1.1 供试土壤 | 第108页 |
| 4.1.2 分析方法 | 第108页 |
| 4.2 结果与分析 | 第108-117页 |
| 4.2.1 不同处理条件下的PCP脱氯和CH_4排放 | 第108-109页 |
| 4.2.2 测序序列质量控制与数据分析 | 第109-110页 |
| 4.2.3 表层和底层红树林土壤中的细菌和古菌群落结构差异 | 第110-112页 |
| 4.2.4 PCP和乙酸钠对0-20 cm和80-100 cm土层中细菌群落结构的影响 | 第112-116页 |
| 4.2.5 PCP和乙酸钠对0-20 cm和80-100 cm土层中古菌群落结构的影响 | 第116-117页 |
| 4.3 讨论 | 第117-128页 |
| 4.3.1 红树林土壤中微生物群落结构 | 第117-119页 |
| 4.3.2 PCP和乙酸钠对红树林土壤细菌群落的影响 | 第119-125页 |
| 4.3.3 PCP添加对土壤中铁还原菌群的影响 | 第125-126页 |
| 4.3.4 PCP和乙酸钠对古菌群落结构的影响 | 第126-128页 |
| 4.4 结论 | 第128-129页 |
| 5 基于DNA-SIP技术的PCP还原脱氯对特定微生物菌群的调控机制 | 第129-145页 |
| 5.1 材料和方法 | 第131-133页 |
| 5.1.1 供试土壤 | 第131页 |
| 5.1.2 培养试验 | 第131-132页 |
| 5.1.3 分析方法 | 第132-133页 |
| 5.2 结果与分析 | 第133-140页 |
| 5.2.1 培养结束后CH_4和CO_2的浓度变化 | 第133-134页 |
| 5.2.2 红树林表层(0-20 cm)和底层(80-100 cm)中微生物群落差异 | 第134-136页 |
| 5.2.3 DNA-SIP分层结果分析 | 第136-137页 |
| 5.2.4 分层结果中各层主要菌群结构组成 | 第137-140页 |
| 5.3 讨论 | 第140-143页 |
| 5.3.1 乙酸钠对土壤微生物菌群的影响 | 第140页 |
| 5.3.2 厌氧条件下乙酸钠标记菌群及其与PCP还原脱氯的关系 | 第140-143页 |
| 5.4 结论 | 第143-145页 |
| 6 结论与展望 | 第145-151页 |
| 6.1 结论 | 第145-148页 |
| 6.1.1 纯菌体系下Fe(Ⅲ)还原偶联的PCP还原脱氯过程 | 第145-146页 |
| 6.1.2 群落体系下PCP的还原脱氯动力学及其机制 | 第146-147页 |
| 6.1.3 群落体系下PCP还原脱氯过程中土壤微生物群落的演变特征 | 第147页 |
| 6.1.4 特定体系下PCP对乙酸盐标记菌群的影响 | 第147-148页 |
| 6.2 研究创新点 | 第148-149页 |
| 6.3 研究展望 | 第149-151页 |
| 参考文献 | 第151-171页 |
| 攻读博士学位期间主要学术成果 | 第171页 |
