| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略词表 | 第13-15页 |
| 第1章 绪论 | 第15-17页 |
| 第2章 文献综述（一） | 第17-23页 |
| 1 NRF2信号通路分子基础 | 第17-19页 |
| 1.1 Nrf2的基本结构 | 第17-18页 |
| 1.2 Keapl的基本结构 | 第18-19页 |
| 1.3 ARE | 第19页 |
| 2 NRF2信号通路调控机制 | 第19-20页 |
| 3 NRF2信号通路与中枢系统疾病 | 第20-23页 |
| 3.1 脑卒中 | 第20页 |
| 3.2 帕金森病 | 第20-21页 |
| 3.3 阿尔兹海默病 | 第21页 |
| 3.4 肌萎缩侧索硬化 | 第21-22页 |
| 3.5 亨廷顿病 | 第22页 |
| 3.6 多发性硬化 | 第22-23页 |
| 第3章 文献综述（二） | 第23-31页 |
| 1 ROS的生成和积累 | 第23-25页 |
| 1.1 氧化应激的化学机制 | 第23-24页 |
| 1.2 氧化应激作为血管新生的中介物 | 第24-25页 |
| 2 氧化应激诱导血管新生的机制 | 第25-28页 |
| 2.1 氧化应激、氧化产物和VEGF信号 | 第25-27页 |
| 2.2 氧化应激诱导血管新生的非依赖VEGF机制 | 第27-28页 |
| 3 氧化应激诱导了病理上的血管新生 | 第28-30页 |
| 3.1 氧化应激影响的血管新生过程 | 第28页 |
| 3.2 氧化应激的生理血管新生 | 第28-29页 |
| 3.3 氧化应激的病理血管新生 | 第29页 |
| 3.4 治疗 | 第29-30页 |
| 4 结论 | 第30-31页 |
| 第4章 实验材料与方法 | 第31-51页 |
| 4.1 实验材料 | 第31-33页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第31页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第31-32页 |
| 4.1.3 实验试剂 | 第32-33页 |
| 4.2 实验方法 | 第33-43页 |
| 4.2.1 b End.3 细胞培养 | 第33-34页 |
| 4.2.2 缺氧对Nrf2表达水平的影响 | 第34页 |
| 4.2.3 b End.3 细胞的Nrf2si RNA转染 | 第34-35页 |
| 4.2.4 Nrf2si RNA对缺氧条件下b End.3 细胞的影响 | 第35-36页 |
| 4.2.5 Western blot检测 | 第36-41页 |
| 4.2.6 RT-PCR检测 | 第41-43页 |
| 4.2.7 统计分析 | 第43页 |
| 4.3 结果 | 第43-51页 |
| 4.3.1 缺氧对Nrf2表达水平的影响 | 第43-44页 |
| 4.3.2 Nrf2si RNA转染b End.3 细胞 | 第44-46页 |
| 4.3.3 划痕实验观察Nrf2si RNA对b End.3 细胞迁移能力的影响 | 第46页 |
| 4.3.4 CCK8实验观察Nrf2si RNA对b End.3 细胞增殖能力的影响 | 第46-47页 |
| 4.3.5 Tube Formation实验观察Nrf2si RNA对b End.3 细胞血管形成能力的影响 | 第47-48页 |
| 4.3.6 Western blot检测Nrf2si RNA对b End.3 细胞蛋白水平表达的影响 | 第48-51页 |
| 第5章 讨论 | 第51-59页 |
| 第6章 结论 | 第59-61页 |
| 第7章 创新点 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-79页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第79-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
