摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
第一章 前言 | 第13-24页 |
1.1 多糖概述 | 第13页 |
1.2 多糖分类 | 第13-14页 |
1.2.1 按来源分类 | 第13-14页 |
1.2.2 按组成分类 | 第14页 |
1.3 多糖的提取、分离纯化及结构分析 | 第14-19页 |
1.3.1 多糖的提取 | 第14-16页 |
1.3.2 分离纯化 | 第16页 |
1.3.3 结构解析 | 第16-19页 |
1.3.3.1 化学法 | 第16-17页 |
1.3.3.2 仪器分析 | 第17-19页 |
1.4 多糖的生物活性 | 第19-20页 |
1.4.1 抗肿瘤活性 | 第19页 |
1.4.2 抗氧化活性 | 第19-20页 |
1.4.3 免疫调节活性 | 第20页 |
1.4.4 降血糖、降血脂活性 | 第20页 |
1.5 多糖的构效关系 | 第20-21页 |
1.5.1 物理性质与生物活性的关系 | 第20-21页 |
1.5.2 初级结构与生物活性的关系 | 第21页 |
1.5.3 空间结构与生物活性的关系 | 第21页 |
1.6 黑果枸杞研究现状 | 第21-23页 |
1.6.1 黑果枸杞果实的研究 | 第22页 |
1.6.1.1 黄酮 | 第22页 |
1.6.1.2 色素 | 第22页 |
1.6.1.3 多糖 | 第22页 |
1.6.2 黑果枸杞叶的研究 | 第22-23页 |
1.7 本论文研究的目的及意义 | 第23-24页 |
第二章 黑果枸杞叶多糖的提取、分离纯化及理化性质研究 | 第24-41页 |
2.1 实验材料、试剂及仪器 | 第24-25页 |
2.1.1 实验材料 | 第24页 |
2.1.2 实验试剂 | 第24页 |
2.1.3 实验仪器 | 第24-25页 |
2.2 实验方法 | 第25-30页 |
2.2.1 黑果枸杞叶多糖的提取 | 第25-26页 |
2.2.2 黑果枸杞叶粗多糖CLRLP的分离与纯化 | 第26-27页 |
2.2.3 黑果枸杞叶多糖各组分的物理化学性质 | 第27-30页 |
2.2.3.1 纯度与分子量测定 | 第27页 |
2.2.3.2 单糖组成分析 | 第27-28页 |
2.2.3.3 糖含量测定 | 第28-29页 |
2.2.3.4 蛋白含量测定 | 第29页 |
2.2.3.5 红外光谱 | 第29页 |
2.2.3.6 紫外扫描检测 | 第29-30页 |
2.2.4 统计学分析 | 第30页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第30-40页 |
2.3.1 黑果枸杞叶多糖的提取及分离纯化 | 第30-32页 |
2.3.2 黑果枸杞叶多糖的理化性质 | 第32-40页 |
2.3.2.1 均一性及分子量鉴定 | 第32-34页 |
2.3.2.2 单糖组成分析 | 第34-37页 |
2.3.2.3 糖含量测定 | 第37-38页 |
2.3.2.4 蛋白含量测定 | 第38页 |
2.3.2.5 红外光谱 | 第38-39页 |
2.3.2.6 紫外扫描 | 第39-40页 |
2.4 本章小结 | 第40-41页 |
第三章 黑果枸杞叶多糖的结构表征 | 第41-67页 |
3.1 实验材料、试剂及仪器 | 第41页 |
3.1.1 实验材料 | 第41页 |
3.1.2 实验试剂 | 第41页 |
3.1.3 实验仪器 | 第41页 |
3.2 实验方法 | 第41-44页 |
3.2.1 甲基化分析 | 第41-42页 |
3.2.2 部分酸水解 | 第42-43页 |
3.2.3 单糖组成分析 | 第43页 |
3.2.4 ESI-MS分析 | 第43页 |
3.2.5 核磁分析 | 第43-44页 |
3.3 实验结果 | 第44-66页 |
3.3.1 LRLP4-A的结构表征 | 第44-55页 |
3.3.1.1 LRLP4-A的甲基化分析 | 第44-48页 |
3.3.1.2 LRLP4-A的部分酸水解 | 第48-49页 |
3.3.1.3 LRLP4-A-I的甲基化分析 | 第49-52页 |
3.3.1.4 LRLP4-A-O的质谱分析 | 第52-54页 |
3.3.1.5 LRLP4-A的NMR分析 | 第54-55页 |
3.3.2 LRLP3的结构表征 | 第55-59页 |
3.3.3 LRLP1-A的结构表征 | 第59-62页 |
3.3.4 LRLP2-A的结构表征 | 第62-64页 |
3.3.5 LRLP5-A的结构表征 | 第64-66页 |
3.4 本章小结 | 第66-67页 |
第四章 黑果枸杞叶多糖的抗氧化活性研究 | 第67-82页 |
4.1 实验材料、试剂及仪器 | 第67-68页 |
4.1.1 实验材料 | 第67页 |
4.1.2 实验试剂 | 第67页 |
4.1.3 实验仪器 | 第67-68页 |
4.2 实验主要溶液的配制 | 第68页 |
4.2.1 磷酸盐缓冲液(PBS)的配制 | 第68页 |
4.2.2 完全培养液的配制 | 第68页 |
4.2.3 细胞冻存液的配制 | 第68页 |
4.3 实验方法 | 第68-72页 |
4.3.1 还原能力的测定 | 第69页 |
4.3.2 清除DPPH自由基能力的测定 | 第69页 |
4.3.3 清除羟自由基能力的测定 | 第69-70页 |
4.3.4 清除超氧阴离子能力的测定 | 第70页 |
4.3.5 体外蛋白水平抗氧化活性的测定 | 第70页 |
4.3.6 体外细胞水平抗氧化活性的测定 | 第70-72页 |
4.3.7 统计学分析 | 第72页 |
4.4 实验结果与讨论 | 第72-80页 |
4.4.1 黑果枸杞叶多糖的还原能力 | 第72-73页 |
4.4.2 黑果枸杞叶多糖对DPPH自由基的清除能力 | 第73-74页 |
4.4.3 黑果枸杞叶多糖对羟自由基的清除能力 | 第74-75页 |
4.4.4 黑果枸杞叶多糖对超氧阴离子的清除能力 | 第75-76页 |
4.4.5 黑果枸杞叶多糖的体外蛋白抗氧化活性 | 第76-77页 |
4.4.6 黑果枸杞叶多糖的体外细胞抗氧化活性 | 第77-80页 |
4.5 本章小结 | 第80-82页 |
第五章 黑果枸杞叶多糖的免疫活性研究 | 第82-101页 |
5.1 实验材料、试剂及仪器 | 第82-83页 |
5.1.1 实验材料 | 第82页 |
5.1.2 实验试剂 | 第82页 |
5.1.3 实验仪器 | 第82-83页 |
5.2 主要试剂的配制 | 第83页 |
5.3 实验方法 | 第83-89页 |
5.3.1 黑果枸杞叶多糖对正常小鼠体外脾细胞增殖的影响 | 第83-84页 |
5.3.2 黑果枸杞叶多糖对小鼠巨噬细胞RAW 264.7功能的影响 | 第84-89页 |
5.3.2.1 RAW 264.7细胞的培养 | 第84页 |
5.3.2.2 黑果枸杞叶多糖对RAW 264.7细胞增殖的影响 | 第84-85页 |
5.3.2.3 黑果枸杞叶多糖对RAW 264.7细胞吞噬能力的影响 | 第85页 |
5.3.2.4 黑果枸杞叶多糖对RAW 264.7细胞分泌NO的影响 | 第85-86页 |
5.3.2.5 黑果枸杞叶多糖对RAW 264.7细胞分泌肿瘤坏死因子(TNF-α)的影响 | 第86页 |
5.3.2.6 黑果枸杞叶多糖对RAW 264.7细胞细胞毒活性的影响 | 第86-87页 |
5.3.2.7 黑果枸杞多糖LRLP3-A对RAW 264.7细胞因子mRNA表达的影响 | 第87-89页 |
5.3.3 统计学分析 | 第89页 |
5.4 实验结果与讨论 | 第89-100页 |
5.4.1 黑果枸杞叶多糖对正常小鼠体外脾细胞增殖的影响 | 第89-92页 |
5.4.2 黑果枸杞叶多糖对小鼠巨噬细胞RAW 264.7功能的影响 | 第92-100页 |
5.4.2.1 对RAW 264.7细胞活力的影响 | 第92-93页 |
5.4.2.2 对RAW 264.7细胞吞噬能力的影响 | 第93-94页 |
5.4.2.3 对RAW 264.7细胞分泌NO的影响 | 第94-95页 |
5.4.2.4 对RAW 264.7细胞分泌TNF-α的影响 | 第95-96页 |
5.4.2.5 对RAW 264.7细胞毒活性的影响 | 第96-99页 |
5.4.2.6 对RAW 264.7细胞iNOS mRNA和TNF-α mRNA表达的影响 | 第99-100页 |
5.5 本章小结 | 第100-101页 |
结论 | 第101-103页 |
参考文献 | 第103-117页 |
攻读博士学位期间取得的科研成果 | 第117-120页 |
(Ⅰ) 攻读博士学位期间取得的学术成果 | 第117-119页 |
(Ⅱ) 攻读博士学位期间参与的主要科研项目 | 第119-120页 |
致谢 | 第120-122页 |
作者简介 | 第122页 |