| 中文摘要 | 第14-19页 |
| ABSTRACT | 第19-23页 |
| 英文缩写词汇对照表 | 第24-27页 |
| 第一章 前言 | 第27-42页 |
| 1 骨性关节炎 | 第27-29页 |
| 1.1 骨性关节炎的发病机理 | 第27-29页 |
| 2 补体系统 | 第29-34页 |
| 2.1 补体系统的激活 | 第29-31页 |
| 2.2 补体系统的分析方法 | 第31-34页 |
| 3 近红外光谱分析技术 | 第34-35页 |
| 4 糖胺聚糖在补体系统中的作用简介 | 第35-39页 |
| 4.1 糖胺聚糖 | 第35-37页 |
| 4.2 肝素及其衍生物在补体系统中的作用 | 第37-38页 |
| 4.3 硫酸皮肤素和硫酸角质素在补体系统中的作用 | 第38页 |
| 4.4 硫酸软骨素及其衍生物在补体系统中的作用 | 第38-39页 |
| 5 LMWCSs生产工艺概述 | 第39-40页 |
| 6 本课题研究的主要内容 | 第40-42页 |
| 第二章 低分子量硫酸软骨素的制备及表征 | 第42-54页 |
| 1 材料 | 第42-43页 |
| 1.1 试剂 | 第42-43页 |
| 1.2 仪器 | 第43页 |
| 1.3 溶液的配制 | 第43页 |
| 2 方法 | 第43-46页 |
| 2.1 LMWCSs样品的制备 | 第43-45页 |
| 2.2 红外光谱(FTIR)分析 | 第45页 |
| 2.3 UV-Vis分析 | 第45页 |
| 2.4 HPLC分析 | 第45-46页 |
| 2.5 核磁(NMR)分析 | 第46页 |
| 2.6 重均分子量的测定 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-52页 |
| 3.1 FTIR结果 | 第46-47页 |
| 3.2 UV-Vis结果 | 第47-48页 |
| 3.3 HPLC结果 | 第48-50页 |
| 3.4 NMR分析结果 | 第50-51页 |
| 3.5 CS以及LMWCS的M_w结果 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 第三章 不同低分子量硫酸软骨素的抗补体活性研究与构效关系分析 | 第54-62页 |
| 1 材料 | 第54-56页 |
| 1.1 试剂 | 第54-55页 |
| 1.2 仪器与软件 | 第55页 |
| 1.3 动物 | 第55页 |
| 1.4 溶液的配制 | 第55-56页 |
| 2 方法 | 第56-57页 |
| 2.1 硫酸软骨素样品抗补体活性的测定 | 第56页 |
| 2.2 基于主成分分析的LMWCSs的构效关系分析 | 第56-57页 |
| 3 结果 | 第57-58页 |
| 4 构效关系分析 | 第58-61页 |
| 4.1 LMWCSs与CS的活性比较 | 第58-59页 |
| 4.2 不同来源的LMWCSs的抗补体活性比较 | 第59-61页 |
| 4.3 不同制备方法的LMWCSs的抗补体活性比较 | 第61页 |
| 5 结论 | 第61-62页 |
| 第四章 低分子量硫酸软骨素对软骨细胞的影响体外研究 | 第62-78页 |
| 1 材料 | 第62-65页 |
| 1.1 试剂 | 第62-63页 |
| 1.2 仪器 | 第63页 |
| 1.3 动物 | 第63页 |
| 1.4 溶液的配制 | 第63-65页 |
| 2 方法 | 第65-70页 |
| 2.1 抑制C3蛋白沉积的检测 | 第65页 |
| 2.2 软骨细胞的提取及鉴定 | 第65-67页 |
| 2.3 MTT法检测LMWCS对软骨细胞毒性的影响 | 第67页 |
| 2.4 LMWCS对NHS介导的软骨细胞死亡的保护作用 | 第67-68页 |
| 2.5 LMWCS对软骨细胞C3的mRNA水平的影响 | 第68-70页 |
| 3 结果 | 第70-75页 |
| 3.1 LMWCS抑制C3蛋白沉积能力结果 | 第70-71页 |
| 3.2 软骨细胞的鉴定 | 第71-72页 |
| 3.3 MTT法检测LMWCS对软骨细胞毒性的影响结果 | 第72-73页 |
| 3.4 LMWCS对NHS介导的软骨细胞死亡的保护作用 | 第73-75页 |
| 3.5 RT-PCR结果 | 第75页 |
| 4 讨论 | 第75-77页 |
| 5 结论 | 第77-78页 |
| 第五章 低分子量硫酸软骨素对实验性骨性关节炎的影响研究 | 第78-91页 |
| 1 材料 | 第78-79页 |
| 1.1 试剂 | 第78页 |
| 1.2 仪器 | 第78-79页 |
| 1.3 动物 | 第79页 |
| 1.4 溶液的配制 | 第79页 |
| 2 方法 | 第79-84页 |
| 2.1 小鼠内侧半月板不稳定(DMM)模型的建立和治疗 | 第79-81页 |
| 2.2 小鼠后腿支撑力检测 | 第81页 |
| 2.3 小鼠血清C5b-9含量的检测 | 第81-82页 |
| 2.4 小鼠关节的番红固绿染色分析 | 第82-83页 |
| 2.5 小鼠关节软骨免疫组化染色 | 第83-84页 |
| 3 结果 | 第84-88页 |
| 3.1 小鼠DMM模型的建立 | 第84-85页 |
| 3.2 小鼠支撑力差值的检测结果 | 第85-86页 |
| 3.3 小鼠血清中C5b-9含量检测结果 | 第86-87页 |
| 3.4 小鼠膝关节番红固绿染色结果 | 第87-88页 |
| 3.5 小鼠关节软骨免疫组化分析结果 | 第88页 |
| 4 讨论 | 第88-90页 |
| 5 结论 | 第90-91页 |
| 第六章 基于近红外光谱筛选硫酸软骨素抗补体活性分析方法的建立 | 第91-105页 |
| 1 材料 | 第91-93页 |
| 1.1 试剂 | 第91页 |
| 1.2 仪器与软件 | 第91-92页 |
| 1.3 动物 | 第92页 |
| 1.4 溶液的配制 | 第92-93页 |
| 2 方法 | 第93-96页 |
| 2.1 参考方法的分析 | 第93页 |
| 2.2 光谱采集 | 第93页 |
| 2.3 样品集划分 | 第93-94页 |
| 2.4 光谱预处理方法 | 第94-95页 |
| 2.5 有效信息选择 | 第95页 |
| 2.6 PLS模型的建立 | 第95页 |
| 2.7 模型评价与验证 | 第95-96页 |
| 3 结果 | 第96-102页 |
| 3.1 参考方法结果与光谱解析 | 第96-98页 |
| 3.2 光谱的预处理结果 | 第98-99页 |
| 3.3 有效信息提取结果 | 第99-101页 |
| 3.4 PLS模型的建立和验证 | 第101-102页 |
| 4 讨论 | 第102-104页 |
| 5 结论 | 第104-105页 |
| 论文总结与展望 | 第105-108页 |
| 1 全文总结 | 第105-106页 |
| 2 创新点 | 第106页 |
| 3 论文的不足之处 | 第106-107页 |
| 4 展望 | 第107-108页 |
| 参考文献 | 第108-120页 |
| Article 1 | 第120-128页 |
| Article 2 | 第128-143页 |
| Article 3 | 第143-150页 |
| Article 4 | 第150-157页 |
| 致谢 | 第157-159页 |
| 攻读博士学位期间发表的学术论文 | 第159-160页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第160页 |
