致谢 | 第1-7页 |
摘要 | 第7-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
专业词汇中英文对照 | 第11-16页 |
第一章 绪论 | 第16-36页 |
·红细胞分化和发育的概述 | 第17-26页 |
·红细胞分化发育基本过程 | 第17-19页 |
·红细胞分化调控的研究 | 第19-25页 |
·红细胞分化和发育异常引起的疾病及治疗 | 第25-26页 |
·microRNA调控红细胞分化的研究进展 | 第26-29页 |
·正调控红细胞分化的microRNA | 第27-28页 |
·负调控红细胞分化的microRNA | 第28页 |
·microRNA调控红细胞分化的主要研究方法 | 第28-29页 |
·Hsa-miR-200a的研究进展 | 第29-31页 |
·miR-200a在癌症中的功能研究 | 第30-31页 |
·miR-200a在细胞分化中的功能研究 | 第31页 |
·PDCD4的研究进展 | 第31-32页 |
·PDCD4在肿瘤中的功能研究 | 第31页 |
·PDCD4在细胞分化中的功能研究 | 第31-32页 |
·THRB的研究进展 | 第32-36页 |
·TRβ作为核内转录因子 | 第32页 |
·TRβ的生理功能 | 第32-36页 |
第二章 材料和方法 | 第36-56页 |
·实验试剂和仪器 | 第36-38页 |
·实验试剂和耗材 | 第36-37页 |
·试剂盒 | 第37页 |
·常用溶液和培养基 | 第37-38页 |
·实验仪器 | 第38页 |
·质粒 | 第38-43页 |
·用于基因过表达的质粒 | 第38-39页 |
·用于基因敲低的质粒 | 第39-40页 |
·用于双荧光素酶报告检测的质粒 | 第40页 |
·质粒的构建 | 第40-42页 |
·突变型pGL3-CMV-luc-3'UTR质粒的获得 | 第42-43页 |
·细胞 | 第43-48页 |
·细胞来源 | 第43-44页 |
·细胞复苏、培养及冻存 | 第44-45页 |
·细胞红系分化诱导 | 第45-46页 |
·细胞转染 | 第46-47页 |
·稳定细胞系构建 | 第47-48页 |
·基因表达的检测 | 第48-52页 |
·miRNA荧光实时定量PCR | 第48-50页 |
·mRNA荧光实时定量PCR | 第50-51页 |
·免疫印迹技术(western blot) | 第51-52页 |
·流式细胞仪分析细胞表面CD235a和CD71表达 | 第52页 |
·细胞血红蛋白浓度检测 | 第52-53页 |
·miRNA靶基因鉴定 | 第53-54页 |
·双荧光素酶报告实验 | 第53页 |
·RNA诱导沉默复合体-免疫共沉淀技术(RISC-IP) | 第53-54页 |
·高通量测序 | 第54-55页 |
·转录组测序 | 第54页 |
·miRNA组测序 | 第54-55页 |
·数据分析 | 第55页 |
·统计学分析 | 第55-56页 |
第三章 结果与讨论 | 第56-82页 |
·筛选调控红细胞分化的miRNA | 第56-61页 |
·从HESC到PBER的miRNA数据中筛选候选miRNA | 第56-57页 |
·候选miRNA在其它红细胞分化研究模型中的表达谱 | 第57-61页 |
·miR-200a调控红细胞分化 | 第61-66页 |
·K562中过表达miR-200a抑制珠蛋白基因表达 | 第61-62页 |
·TF-1中过表达miR-200a抑制珠蛋白及红系重要基因的表达 | 第62-63页 |
·miR-200a抑制诱导的TF-1红系分化 | 第63-66页 |
·miR-200a调控TF-1细胞的转录组学研究 | 第66-71页 |
·转录组分析概况 | 第66-67页 |
·转录组功能分析进一步证实miR-200a对红系分化的影响 | 第67-71页 |
·miR-200a的靶基因筛选 | 第71-72页 |
·PDCD4是miR-200a的一个靶基因 | 第72-75页 |
·miR-200a抑制PDCD4表达 | 第72-73页 |
·miR-200a能够结合在PDCD4的3'-UTR上 | 第73-75页 |
·THRB是miR-200a的一个靶基因 | 第75-76页 |
·miR-200a靶基因的功能研究 | 第76-82页 |
·PDCD4的功能研究 | 第76-78页 |
·THRB的功能研究 | 第78-82页 |
第四章 结论 | 第82-84页 |
参考文献 | 第84-100页 |
附录 | 第100-120页 |
作者简介及在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第120-121页 |