| 摘要 | 第1-3页 |
| Abstract | 第3-6页 |
| 引言 | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第7-13页 |
| ·藻类的概述 | 第7-9页 |
| ·藻类在生态系统中的地位 | 第7页 |
| ·藻类在环境监测中的应用 | 第7-8页 |
| ·藻类在毒理学研究中的应用 | 第8-9页 |
| ·三(2,3-二溴丙基)异氰酸酯(TBC)概述 | 第9-11页 |
| ·阻燃剂概述 | 第9页 |
| ·持久性有机污染物概述 | 第9-10页 |
| ·三(2,3-二溴丙基)异氰酸酯(TBC)概述 | 第10-11页 |
| ·研究目的和内容 | 第11-12页 |
| ·研究意义 | 第12-13页 |
| 第二章 TBC对微拟球藻的生长抑制 | 第13-22页 |
| ·TBC的前处理 | 第13页 |
| ·实验材料 | 第13-15页 |
| ·药品及实验仪器 | 第13-14页 |
| ·微拟球藻的培养 | 第14-15页 |
| ·实验方法 | 第15-18页 |
| ·TBC培养液的配制 | 第15页 |
| ·DMSO不可见效应浓度 | 第15-16页 |
| ·微拟球藻生长量的测定 | 第16-17页 |
| ·TBC对微拟球藻生长的影响 | 第17-18页 |
| ·结果与讨论 | 第18-21页 |
| ·微拟球藻细胞个数与藻液光密度之间关系 | 第18页 |
| ·生长曲线的绘制 | 第18-19页 |
| ·TBC对微拟球藻生长的影响 | 第19-21页 |
| ·小结 | 第21-22页 |
| 第三章 TBC对微拟球藻光合作用及相关基因表达水平的影响 | 第22-34页 |
| ·试验材料 | 第23-24页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·主要实验仪器 | 第23-24页 |
| ·微拟球藻的培养 | 第24页 |
| ·试验方法 | 第24-28页 |
| ·微拟球藻的暴露及试验材料的处理 | 第24页 |
| ·TBC暴露对微拟球藻叶绿素浓度变化的影响 | 第24-25页 |
| ·TBC暴露对微拟球藻光合活性变化的影响 | 第25页 |
| ·微拟球藻总RNA的提取 | 第25-26页 |
| ·cDNA的合成 | 第26页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第26-27页 |
| ·微拟球藻光合作用相关基因的Real Time-PCR反应 | 第27-28页 |
| ·结果与讨论 | 第28-32页 |
| ·叶绿素浓度检测结果 | 第28-29页 |
| ·光合活性检测结果 | 第29-30页 |
| ·荧光定量PCR(Real Time-PCR)检测结果 | 第30-32页 |
| ·小结 | 第32-34页 |
| 第四章 浊点萃取法检测河水中的金雀异黄素和大豆苷元 | 第34-43页 |
| ·试验材料 | 第35页 |
| ·主要试剂 | 第35页 |
| ·主要实验仪器 | 第35页 |
| ·实验样品 | 第35页 |
| ·试验方法 | 第35-37页 |
| ·金雀异黄素和大豆苷元标准液制备 | 第35页 |
| ·河水样品采集 | 第35-36页 |
| ·浊点萃取过程 | 第36页 |
| ·表面活性剂浓度对萃取效率的影响 | 第36页 |
| ·Na_2SO_4浓度对萃取效率的影响 | 第36页 |
| ·平衡时间对萃取效率的影响 | 第36页 |
| ·平衡温度对萃取效率的影响 | 第36-37页 |
| ·离心时间对萃取效率的影响 | 第37页 |
| ·分析方法的特征 | 第37页 |
| ·河水样品分析 | 第37页 |
| ·实验结果与讨论 | 第37-42页 |
| ·表面活性剂浓度对萃取效率的影响结果 | 第37-38页 |
| ·Na_2SO_4浓度对萃取效率的影响结果 | 第38页 |
| ·平衡时间对萃取效率的影响结果 | 第38页 |
| ·平衡温度对萃取效率的影响结果 | 第38-39页 |
| ·离心时间对萃取效率的影响结果 | 第39页 |
| ·分析方法特征结果 | 第39-40页 |
| ·河水样品分析结果 | 第40-42页 |
| ·小结 | 第42-43页 |
| 第五章 结论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
