目录 | 第1-6页 |
英文缩略词表 | 第6-8页 |
摘要 | 第8-15页 |
Abstract | 第15-24页 |
前言 | 第24-32页 |
第一部分 氟西汀下调神经元型一氧化氮合酶的表达 | 第32-56页 |
材料与方法 | 第32-42页 |
一、动物 | 第32页 |
二、主要试剂和药品 | 第32-33页 |
三、主要仪器 | 第33页 |
四、动物分组及给药方案 | 第33-35页 |
五、Bradford法蛋白定量 | 第35页 |
六、海马组织匀浆NOS活性测定 | 第35-36页 |
七、逆转录-聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第36-37页 |
八、蛋白免疫印迹分析(Western blot) | 第37-38页 |
九、动物模型的建立 | 第38-42页 |
十、数据统计和分析 | 第42页 |
结果 | 第42-51页 |
一、通过未预知的长期温和应激刺激建立抑郁动物模型,海马nNOS表达异常升高 | 第42-44页 |
二、长期氟西汀给药下调海马nNOS的表达 | 第44-46页 |
三、急性氟西汀给药对海马nNOS表达没有影响 | 第46-48页 |
四、长期氟西汀给药下调海马NOS活性 | 第48-49页 |
五、长期三环类抗抑郁药给药对海马nNOS表达没有影响 | 第49-50页 |
六、通过利血平建立神经生化抑郁动物模型,海马nNOS表达没有改变 | 第50-51页 |
讨论 | 第51-56页 |
第二部分 L-精氨酸阻断氟西汀的抗抑郁作用 | 第56-78页 |
材料与方法 | 第57-63页 |
一、动物 | 第57页 |
二、主要试剂和药品 | 第57页 |
三、主要仪器 | 第57-58页 |
四、动物分组及给药方案 | 第58-59页 |
五、动物行为学检测 | 第59-62页 |
六、Brdu免疫组化 | 第62-63页 |
七、数据统计和分析 | 第63页 |
结果 | 第63-73页 |
一、L-精氨酸削弱氟西汀在FST、TST上的抗抑郁作用 | 第63-66页 |
二、D-精氨酸对氟西汀在FST、TST上抗抑郁作用无影响 | 第66-68页 |
三、L-精氨酸完全阻断氟西汀在NSF模型上的抗抑郁作用 | 第68-70页 |
四、D-精氨酸对氟西汀在NSF模型上抗抑郁作用没有影响 | 第70-71页 |
五、L-精氨酸削弱氟西汀促神经元增殖作用 | 第71-73页 |
讨论 | 第73-78页 |
第三部分 nNOS敲除小鼠对氟西汀缺乏反应 | 第78-96页 |
材料与方法 | 第79-81页 |
一、动物 | 第79-80页 |
二、主要试剂与药品 | 第80页 |
三、主要仪器 | 第80页 |
四、动物分组及给药方案 | 第80-81页 |
五、动物行为学检测 | 第81页 |
六、Brdu免疫组化 | 第81页 |
七、数据统计和分析 | 第81页 |
结果 | 第81-90页 |
一、nNOS~(-/-)小鼠特性:对抑郁抵抗 | 第81-84页 |
二、在FST模型上,nNOS~(-/-)小鼠对氟西汀缺乏反应 | 第84-86页 |
三、在NSF模型上,nNOS~(-/-)小鼠对氟西汀缺乏反应 | 第86-87页 |
四、在nNOS~(-/-)小鼠,氟西汀促神经元增殖作用消失 | 第87-90页 |
讨论 | 第90-96页 |
小结 | 第96-97页 |
参考文献 | 第97-102页 |
附录1 在读期间发表的与本论文相关的文章 | 第102-103页 |
附录2 综述 | 第103-135页 |
附录3 致谢 | 第135-136页 |