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雨生红球藻表达载体的构建与电转化研究

摘要第1-8页
Abstract第8-13页
第一章 绪论第13-30页
   ·雨生红球藻概述第13-15页
     ·雨生红球藻的生物学特性第13-14页
     ·利用雨生红球藻生产虾青素的现状及其局限性第14-15页
   ·雨生红球藻遗传转化研究进展第15-19页
     ·雨生红球藻中虾青素合成相关酶基因的克隆和调控研究第15-18页
     ·雨生红球藻遗传转化研究进展第18-19页
   ·真核微藻的遗传转化研究进展第19-28页
     ·选择标记第20-22页
     ·启动子第22-26页
     ·真核微藻的遗传转化方法第26-28页
   ·本课题的研究意义和研究内容第28-30页
第二章 雨生红球藻α-tubulin 5’-侧翼区域的分离第30-51页
   ·实验材料第30-32页
     ·雨生红球藻藻株第30页
     ·引物合成与序列测序第30-31页
     ·主要试剂第31页
     ·主要仪器设备第31-32页
   ·研究方法第32-40页
     ·雨生红球藻培养方法第32-33页
     ·分离雨生红球藻α-tubulin基因5’-侧翼区域的实验流程第33页
     ·基因组DNA的提取第33-34页
     ·α-tubulin基因组DNA片段的扩增第34-35页
     ·基因组步移法分离α-tubulin基因5’-侧翼区域第35-40页
   ·结果与讨论第40-50页
     ·雨生红球藻α-tubulin基因组序列的扩增第40-44页
     ·α-tubulin基因5’-侧翼区域的分离第44-47页
     ·α-tubulin基因5’-侧翼序列分析第47-50页
   ·本章小结第50-51页
第三章 雨生红球藻表达载体的构建第51-63页
   ·实验材料第51-52页
     ·大肠杆菌菌株和质粒第51页
     ·引物合成与序列测序第51-52页
     ·主要试剂第52页
     ·主要仪器设备第52页
   ·研究方法第52-58页
     ·构建雨生红球藻表达载体的实验流程图第52-53页
     ·PCR扩增α-tubulin基因5’-侧翼区域(加酶切位点)第53-54页
     ·SOE PCR扩增Sh ble-莱茵衣藻rbcS2 终止子片段第54-55页
     ·载体pSP124S的酶切和去磷酸化第55-56页
     ·目的片段和载体的连接第56-57页
     ·E.coli DH5α感受态细胞的制备第57页
     ·转化大肠杆菌第57-58页
     ·重组质粒的筛选与鉴定第58页
   ·结果与讨论第58-62页
     ·雨生红球藻α-tubulin基因5’-侧翼区域的扩增(加酶切位点)第58-59页
     ·Sh ble-莱茵衣藻rbcS2 终止子片段的扩增第59页
     ·载体pSP124S的酶切第59-60页
     ·目的片段和载体的连接第60页
     ·重组质粒的鉴定第60-62页
   ·本章小结第62-63页
第四章 雨生红球藻电转化方法的建立第63-79页
   ·实验材料第63-64页
     ·主要试剂第63页
     ·主要仪器设备第63-64页
     ·引物第64页
   ·研究方法第64-69页
     ·细胞生长曲线测定第64页
     ·载体DNA制备第64页
     ·雨生红球藻在固体KM1 培养基中对zeocin的敏感性检测第64-65页
     ·电转化程序第65-66页
     ·RT-PCR检测ble基因的瞬时表达第66-69页
   ·结果与讨论第69-77页
     ·雨生红球藻生长曲线第69页
     ·雨生红球藻在固体KM1 培养基中对zeocin的敏感性第69-70页
     ·电击缓冲液、DNA和温度第70-71页
     ·电击条件对雨生红球藻细胞存活率的影响第71-75页
     ·RT-PCR检测ble基因在雨生红球藻中的瞬时表达第75-77页
     ·ble稳定转化子筛选第77页
   ·本章小结第77-79页
结论与展望第79-81页
 结论第79-80页
 创新点第80页
 展望第80-81页
参考文献第81-94页
攻读硕士学位期间取得的研究成果第94-95页
致谢第95页

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