| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 主要缩略词和符号表 | 第11-12页 |
| 文献综述 | 第12-24页 |
| 1 多肽组学研究 | 第12-17页 |
| 1.1 多肽简介 | 第12页 |
| 1.2 生物活性肽的产生过程 | 第12-13页 |
| 1.3 蛋白水解调节生物活性肽 | 第13页 |
| 1.4 多肽组学研究 | 第13-14页 |
| 1.5 定量多肽组学 | 第14-15页 |
| 1.6 多肽组学的应用 | 第15-17页 |
| 1.6.1 定量多肽组学可以用来检测生物活性肽 | 第15-16页 |
| 1.6.2 多肽组学技术用于发现生物标记分子的研究 | 第16页 |
| 1.6.3 应用多肽组学技术研究蛋白水解的过程 | 第16-17页 |
| 2 细胞凋亡及其研究进展 | 第17-23页 |
| 2.1 酵母细胞凋亡的表征及诱导因素 | 第18-19页 |
| 2.2 酵母细胞凋亡检测方法 | 第19-20页 |
| 2.3 活性氧在细胞凋亡中的作用 | 第20-22页 |
| 2.4 酵母细胞凋亡与YCA1的关系 | 第22-23页 |
| 3 本研究的目的及意义 | 第23-24页 |
| 1 引言 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.2 化学试剂 | 第25页 |
| 2.3 实验仪器 | 第25页 |
| 2.4 研究方法 | 第25-29页 |
| 2.4.1 酵母细胞培养及生长曲线的测定 | 第25-26页 |
| 2.4.2 酵母细胞存活率测定 | 第26页 |
| 2.4.3 点实验 | 第26页 |
| 2.4.4 细胞凋亡检测 | 第26-27页 |
| 2.4.5 多肽提取 | 第27-28页 |
| 2.4.6 nanoLC-MS/MS分析 | 第28页 |
| 2.4.7 数据分析 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-44页 |
| 3.1 酵母细胞生长曲线的测定 | 第29-30页 |
| 3.2 过氧化氢对酵母存活率的影响 | 第30-31页 |
| 3.3 过氧化氢诱导酵母细胞凋亡的检测 | 第31-32页 |
| 3.4 过氧化氢处理野生型酿酒酵母细胞BY4741后多肽的鉴定 | 第32-35页 |
| 3.5 过氧化氢处理突变株Δyca1后多肽的鉴定 | 第35-37页 |
| 3.6 比较过氧化氢处理野生型BY4741和突变株Δyca1后多肽的变化 | 第37-44页 |
| 4 讨论 | 第44-47页 |
| 5 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-59页 |
| 作者简介 | 第59-60页 |
| 附录 | 第60-81页 |
