迁移体发现及其超微结构研究
| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 主要英文缩略词对照表 | 第10-11页 |
| 第1章 前言 | 第11-36页 |
| 1.1 细胞器概述 | 第11-12页 |
| 1.2 细胞迁移 | 第12-14页 |
| 1.2.1 细胞迁移重要性 | 第12页 |
| 1.2.2 细胞骨架与细胞迁移 | 第12-13页 |
| 1.2.3 迁移体发现 | 第13-14页 |
| 1.3 电子显微镜在超微结构研究中的作用 | 第14-16页 |
| 1.4 电子显微镜概述 | 第16-18页 |
| 1.4.1 透射电子显微镜概述 | 第16-17页 |
| 1.4.2 扫描电子显微镜概述 | 第17-18页 |
| 1.5 电镜制样技术 | 第18-27页 |
| 1.5.1 常规化学固定制样 | 第18-19页 |
| 1.5.2 免疫电镜技术 | 第19页 |
| 1.5.3 冷冻固定制样 | 第19-27页 |
| 1.6 三维重构技术 | 第27-31页 |
| 1.6.1 电子断层扫描成像技术 | 第27-29页 |
| 1.6.2 连续超薄切片成像技术 | 第29-31页 |
| 1.7 光镜电镜关联技术 | 第31-36页 |
| 1.7.1 同一个样品CLEM制样 | 第31-34页 |
| 1.7.2 同一个切片CLEM制样 | 第34-36页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第36-55页 |
| 2.1 实验材料 | 第36-39页 |
| 2.1.1 实验动物及细胞 | 第36页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第36页 |
| 2.1.3 试剂配制 | 第36-39页 |
| 2.2 实验仪器 | 第39-40页 |
| 2.3 实验方法 | 第40-55页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第40-42页 |
| 2.3.2 活细胞观察 | 第42页 |
| 2.3.3 常规化学固定样品制备 | 第42-45页 |
| 2.3.4 培养细胞扫描电镜制样 | 第45页 |
| 2.3.5 光电联用实验 | 第45-47页 |
| 2.3.6 负染色 | 第47-48页 |
| 2.3.7 包埋前免疫标记 | 第48页 |
| 2.3.8 铜网支持膜制备 | 第48-49页 |
| 2.3.9 超薄切片 | 第49页 |
| 2.3.10 超薄切片染色 | 第49-50页 |
| 2.3.11 高压冷冻固定制样 | 第50-53页 |
| 2.3.12 电子断层扫描技术样品准备 | 第53页 |
| 2.3.13 FIB-SEM样品准备 | 第53-55页 |
| 第3章 石榴样结构的发现及形态描述 | 第55-65页 |
| 3.1 引言 | 第55页 |
| 3.2 实验结果 | 第55-64页 |
| 3.2.1 细胞外发现石榴样结构 | 第55-57页 |
| 3.2.2 石榴样结构在收缩丝上 | 第57-62页 |
| 3.2.3 石榴样结构的三维重构结果 | 第62-64页 |
| 3.3 讨论与小结 | 第64-65页 |
| 第4章 纯化石榴样结构的形态 | 第65-70页 |
| 4.1 引言 | 第65页 |
| 4.2 实验结果 | 第65-68页 |
| 4.3 讨论与小结 | 第68-70页 |
| 第5章 TSPAN4定位在石榴样结构上 | 第70-75页 |
| 5.1 引言 | 第70-71页 |
| 5.2 实验结果 | 第71-74页 |
| 5.2.1 包埋前免疫标记结果 | 第71-72页 |
| 5.2.2 光镜-透射电镜连用结果 | 第72-73页 |
| 5.2.3 光镜-扫描电镜连用结果 | 第73-74页 |
| 5.3 讨论与小结 | 第74-75页 |
| 第6章 高压冷冻固定收缩丝和迁移体的形态 | 第75-81页 |
| 6.1 引言 | 第75页 |
| 6.2 实验结果 | 第75-78页 |
| 6.2.1 收缩丝内有微管和微丝 | 第75-77页 |
| 6.2.2 迁移体内有纤维状结构 | 第77-78页 |
| 6.3 讨论与小结 | 第78-81页 |
| 第7章 多种体外培养细胞产生迁移体 | 第81-85页 |
| 7.1 引言 | 第81页 |
| 7.2 实验结果 | 第81-84页 |
| 7.2.1 多种体外培养细胞产生迁移体 | 第81-83页 |
| 7.2.2 3D培养细胞可产生迁移体 | 第83-84页 |
| 7.3 小结 | 第84-85页 |
| 第8章 体内组织中发现迁移体样结构 | 第85-93页 |
| 8.1 引言 | 第85页 |
| 8.2 实验结果 | 第85-91页 |
| 8.2.1 小鼠组织超薄切片结果 | 第85-88页 |
| 8.2.2 大鼠组织超薄切片结果 | 第88-89页 |
| 8.2.3 斑马鱼原肠胚超薄切片结果 | 第89-91页 |
| 8.2.4 鸡胚尿囊膜超薄切片结果 | 第91页 |
| 8.3 讨论与小结 | 第91-93页 |
| 第9章 DSS诱导炎症模型中发现迁移体样结构 | 第93-96页 |
| 9.1 引言 | 第93页 |
| 9.2 实验结果 | 第93-95页 |
| 9.3 小结 | 第95-96页 |
| 第10章 讨论与展望 | 第96-101页 |
| 10.1 论文总结与讨论 | 第96-97页 |
| 10.2 展望 | 第97-101页 |
| 10.2.1 迁移体形态学研究 | 第97-99页 |
| 10.2.2 电镜技术在迁移体研究中的应用 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-115页 |
| 致谢 | 第115-117页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第117页 |
