| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 编略词表（Abbreviation) | 第18-20页 |
| 第一章 文献综述 | 第20-38页 |
| 1.1 植物对Cd的吸收、储存和转运 | 第21-24页 |
| 1.1.1 植物对Cd的吸收 | 第21-22页 |
| 1.1.2 镉的储存和转运 | 第22-24页 |
| 1.2 镉胁迫对植株氧化还原系统的影响 | 第24-27页 |
| 1.2.1 镉胁迫对活性氧的产生的影响 | 第24-25页 |
| 1.2.2 镉胁迫对活性氧的清除途径的影响 | 第25-26页 |
| 1.2.3 ROS在植物应答Cd胁迫过程中的作用 | 第26-27页 |
| 1.3 植物应答Cd胁迫过程中的信号调控过程 | 第27-34页 |
| 1.3.1 植物激素类分子在植株应答Cd胁迫过程中的作用 | 第27-30页 |
| 1.3.2 硫化氢(H_2S)在植物应答Cd胁迫过程中的信号作用 | 第30页 |
| 1.3.3 NO在植物应答Cd胁迫过程中的信号作用 | 第30-34页 |
| 1.4 GSNOR在植物生理生化过程中的作用 | 第34-38页 |
| 1.4.1 GSNOR特性 | 第34-35页 |
| 1.4.2 GSNOR在植物生理生化过程中的作用机制 | 第35页 |
| 1.4.3 GSNOR在植物逆境过程中的作用机理 | 第35-38页 |
| 第二章 问题提出与解决路线 | 第38-40页 |
| 2.1 问题提出 | 第38-39页 |
| 2.2 技术路线 | 第39页 |
| 2.3 拟解决问题 | 第39-40页 |
| 第三章 实验材料与方法 | 第40-54页 |
| 3.1 实验材料 | 第40页 |
| 3.2 植物培养 | 第40-41页 |
| 3.3 过表达植株构建 | 第41-44页 |
| 3.3.1 GSNOR过表达载体pCambia 1300-221-HA-AtGSNOR的构建 | 第41-42页 |
| 3.3.2 重组质粒的转化 | 第42-44页 |
| 3.4 双突变体构建和纯和验证 | 第44-45页 |
| 3.5 实验处理 | 第45-46页 |
| 3.6 核酸提取 | 第46-47页 |
| 3.6.1 植物基因组DNA提取 | 第46页 |
| 3.6.2 RNA提取 | 第46-47页 |
| 3.7 组织化学染色和GFP荧光测定 | 第47-48页 |
| 3.7.1 NO的原位测定 | 第47页 |
| 3.7.2 GSNOR-GFP荧光激光共聚焦测定 | 第47页 |
| 3.7.3 活性氧原位测定 | 第47页 |
| 3.7.4 Evans Blue染色 | 第47-48页 |
| 3.8 镉含量及吸收速率测定 | 第48页 |
| 3.8.1 Cd含量分析 | 第48页 |
| 3.8.2 ~(108)Cd吸收速率分析 | 第48页 |
| 3.8.3 NMT技术Cd吸收速率分析 | 第48页 |
| 3.9 氧化胁迫相关物质浓度测定 | 第48-50页 |
| 3.9.1 H_2O_2和O_2~(·-)含量测定 | 第48-49页 |
| 3.9.2 MDA含量测定 | 第49页 |
| 3.9.3 GSH和ASA含量测定 | 第49-50页 |
| 3.10 H_2S含量测定 | 第50页 |
| 3.11 酶活性测定 | 第50-52页 |
| 3.11.1 GSNOR活性测定 | 第50-51页 |
| 3.11.2 NADPH氧化酶活性测定 | 第51页 |
| 3.11.3 SOD活性测定 | 第51-52页 |
| 3.11.4 过氧化氢(CAT)活性测定 | 第52页 |
| 3.11.5 APX活性测定 | 第52页 |
| 3.11.6 过氧化物酶(POD)活性测定 | 第52页 |
| 3.12 基因表达分析 | 第52-53页 |
| 3.13 Western Blot | 第53页 |
| 3.14 数据分析 | 第53-54页 |
| 第四章 研究结果 | 第54-90页 |
| 4.1 NO清除系统在Cd胁迫诱导的NO积累和Cd吸收中的调控作用 | 第54-70页 |
| 4.1.1 镉胁迫对根系NO积累的影响 | 第54-55页 |
| 4.1.2 AHb1在Cd诱导根系NO过量积累中的作用 | 第55-56页 |
| 4.1.3 AHb1对Cd植株Cd吸收的影响 | 第56-57页 |
| 4.1.4 GSNOR在Cd诱导的根系NO过量积累中的作用 | 第57-58页 |
| 4.1.5 镉胁迫对GSNOR活性的影响 | 第58-61页 |
| 4.1.6 GSNOR对Cd的吸收的影响 | 第61-65页 |
| 4.1.7 NO在GSNOR调控植物Cd吸收的作用 | 第65-68页 |
| 4.1.8 IRT1在GSNOR调控植物Cd吸收中的作用 | 第68-70页 |
| 4.2 H_2S和NRT在GSNOR调控Cd吸收中的作用 | 第70-74页 |
| 4.2.1 H_2S与GSNOR负调控的植株Cd吸收无关 | 第70-72页 |
| 4.2.2 NRTs在GSNOR调控植株Cd吸收中的作用 | 第72-74页 |
| 4.3 GSNOR对植株地上部Cd耐性中的调控作用及机理 | 第74-88页 |
| 4.3.1 GSNOR对植株地上部Cd耐性的影响 | 第74-77页 |
| 4.3.2 镉胁迫对植株地上部GSNOR活性的影响 | 第77-78页 |
| 4.3.3 镉胁迫时GSNOR对活性氧(ROS)积累的影响 | 第78-79页 |
| 4.3.4 GSNOR对Cd胁迫诱导的植株地上部膜脂过氧化的影响 | 第79-80页 |
| 4.3.5 镉胁迫下GSNOR对抗氧化系统的影响 | 第80-85页 |
| 4.3.6 镉胁迫下GSNOR对CATs基因表达的影响 | 第85-87页 |
| 4.3.7 镉胁迫时,CAT在GSNOR调控的H_2O_2积累中的作用 | 第87-88页 |
| 4.4 一氧化氮清除系统调控根系Cd吸收和地上部Cd耐性的机理模型 | 第88-90页 |
| 第五章 讨论 | 第90-98页 |
| 5.1 镉NO清除系统在调控Cd胁迫诱导NO积累中的作用 | 第90-92页 |
| 5.2 GSNOR调控植物根系Cd吸收的作用机理 | 第92-94页 |
| 5.3 GSNOR调控植株地上部Cd耐性的机理 | 第94-98页 |
| 第六章 全文总结 | 第98-100页 |
| 6.1 主要研究结论 | 第98页 |
| 6.2 主要创新点 | 第98页 |
| 6.3 研究展望 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-122页 |
| 博士期间主要研究成果 | 第122页 |
