| 摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-13页 |
| 第一章 绪论 | 第20-50页 |
| 1.1 研究背景 | 第20页 |
| 1.2 油水两难溶性成分 | 第20-23页 |
| 1.2.1 溶解度和溶解限度 | 第20-21页 |
| 1.2.2 影响活性成分溶解度的因素 | 第21页 |
| 1.2.3 油水两难溶性成分 | 第21-23页 |
| 1.3 芦丁(Rutin) | 第23-26页 |
| 1.3.1 芦丁的功效作用 | 第23-25页 |
| 1.3.2 芦丁的应用瓶颈 | 第25-26页 |
| 1.4 槲皮素(Quercetin) | 第26-29页 |
| 1.4.1 槲皮素的功效作用 | 第26-28页 |
| 1.4.2 槲皮素的应用瓶颈 | 第28-29页 |
| 1.5 乳液 | 第29-30页 |
| 1.6 Pickering乳液 | 第30-33页 |
| 1.7 非水乳液 | 第33-34页 |
| 1.8 多重乳液 | 第34-35页 |
| 1.9 传统多重自乳化体系 | 第35-36页 |
| 1.10 非水多重自乳化体系 | 第36-37页 |
| 1.11 研究内容及意义 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-50页 |
| 第二章 脂肪晶体和非离子型表面活性剂协同稳定的芦丁非水多重自乳化体系的制备与评价 | 第50-94页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第51-52页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第51页 |
| 2.1.2 仪器 | 第51-52页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第52页 |
| 2.2 实验方法 | 第52-65页 |
| 2.2.1 芦丁体外分析测定方法的建立 | 第52-53页 |
| 2.2.2 芦丁在不同介质中溶解度的测定 | 第53-54页 |
| 2.2.3 芦丁N-SDEDDS的制备 | 第54-55页 |
| 2.2.4 乳液稳定指数(Emulsionstabilityindex,ESI) | 第55页 |
| 2.2.5 自乳化效率(Self-emulsificationefficiency,SEE) | 第55页 |
| 2.2.6 形貌结构分析 | 第55-56页 |
| 2.2.7 自乳化后粒径分析 | 第56页 |
| 2.2.8 自乳化后包封率和负载量测定 | 第56页 |
| 2.2.9 红外光谱分析(FTIR) | 第56-57页 |
| 2.2.10 差示扫描量热分析(DSC) | 第57页 |
| 2.2.11 粉末X射线衍射分析(XRD) | 第57页 |
| 2.2.12 稳定性考察 | 第57页 |
| 2.2.13 体外溶出度测定 | 第57-58页 |
| 2.2.14 体外模拟消化试验 | 第58-59页 |
| 2.2.15 大鼠在体单向灌流法评价芦丁肠吸收机制的研究 | 第59-62页 |
| 2.2.16 大鼠药物动力学研究 | 第62-64页 |
| 2.2.17 灌胃芦丁N-SDEDDS对大鼠小肠组织病理学研究 | 第64-65页 |
| 2.2.18 数据分析 | 第65页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第65-89页 |
| 2.3.1 芦丁体外分析测定方法的建立 | 第65-68页 |
| 2.3.2 芦丁在不同介质中溶解度的测定 | 第68-69页 |
| 2.3.3 芦丁N-SDEDDS的配方筛选 | 第69-72页 |
| 2.3.4 芦丁N-SDEDDS最优配方的物理表征 | 第72-77页 |
| 2.3.5 稳定性考察 | 第77页 |
| 2.3.6 体外溶出度分析 | 第77-78页 |
| 2.3.7 体外模拟消化 | 第78-79页 |
| 2.3.8 大鼠在体单向灌流法评价芦丁肠吸收机制的研究 | 第79-84页 |
| 2.3.9 大鼠药物动力学研究 | 第84-89页 |
| 2.3.10 灌胃芦丁N-SDEDDS对大鼠小肠组织病理学研究 | 第89页 |
| 2.4 本章小结 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-94页 |
| 第三章 疏水性二氧化硅和非离子型表面活性剂协同稳定的芦丁非水多重自乳化体系的制备与评价 | 第94-120页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第95页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第95页 |
| 3.1.2 仪器 | 第95页 |
| 3.2 实验方法 | 第95-101页 |
| 3.2.1 芦丁N-SDEDDS的制备 | 第95-96页 |
| 3.2.2 乳液稳定指数(Emulsionstabilityindex,ESI) | 第96页 |
| 3.2.3 自乳化效率(Self-emulsificationefficiency,SEE) | 第96页 |
| 3.2.4 粘度测定 | 第96-97页 |
| 3.2.5 PGPR在疏水性二氧化硅上吸附的测定 | 第97页 |
| 3.2.6 形貌结构分析 | 第97-98页 |
| 3.2.7 自乳化后粒径分析 | 第98页 |
| 3.2.8 自乳化后包封率和负载量测定 | 第98页 |
| 3.2.9 红外光谱分析(FTIR) | 第98页 |
| 3.2.10 粉末X射线衍射分析(XRD) | 第98页 |
| 3.2.11 稳定性考察 | 第98页 |
| 3.2.12 体外抗氧化性试验 | 第98-99页 |
| 3.2.13 色谱条件 | 第99页 |
| 3.2.14 体外释放测定 | 第99-100页 |
| 3.2.15 体外经皮渗透研究 | 第100-101页 |
| 3.2.16 数据分析 | 第101页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第101-115页 |
| 3.3.1 芦丁N-SDEDDS的配方筛选 | 第101-104页 |
| 3.3.2 PGPR在疏水性二氧化硅上吸附的测定 | 第104-106页 |
| 3.3.3 芦丁N-SDEDDS最优配方的物理表征 | 第106-110页 |
| 3.3.4 稳定性考察 | 第110-111页 |
| 3.3.5 体外抗氧化性试验 | 第111-112页 |
| 3.3.6 体外释放测定 | 第112-113页 |
| 3.3.7 体外经皮渗透研究 | 第113-115页 |
| 3.4 本章小结 | 第115页 |
| 参考文献 | 第115-120页 |
| 第四章 疏水性膨润土和非离子型表面活性剂协同稳定的芦丁非水多重自乳化体系的制备与评价 | 第120-142页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第121页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第121页 |
| 4.1.2 仪器 | 第121页 |
| 4.2 实验方法 | 第121-125页 |
| 4.2.1 芦丁N-SDEDDS的制备 | 第121-122页 |
| 4.2.2 乳液稳定指数(Emulsionstabilityindex,ESI) | 第122页 |
| 4.2.3 自乳化效率(Self-emulsificationefficiency,SEE) | 第122页 |
| 4.2.4 PGPR在疏水性膨润土上吸附的测定 | 第122页 |
| 4.2.5 形貌结构分析 | 第122页 |
| 4.2.6 自乳化后粒径分析 | 第122页 |
| 4.2.7 自乳化后包封率和负载量测定 | 第122-123页 |
| 4.2.8 红外光谱分析(FTIR) | 第123页 |
| 4.2.9 粉末X射线衍射分析(XRD) | 第123页 |
| 4.2.10 稳定性考察 | 第123页 |
| 4.2.11 色谱条件 | 第123页 |
| 4.2.12 体外释放测定 | 第123页 |
| 4.2.13 体外经皮渗透研究 | 第123页 |
| 4.2.14 傅里叶变换衰减全反射红外光谱法(ATR-FTIR)研究载体与皮肤相互作用规律 | 第123-124页 |
| 4.2.15 皮肤组织病理学研究 | 第124页 |
| 4.2.16 细胞毒性考察 | 第124-125页 |
| 4.2.17 数据分析 | 第125页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第125-137页 |
| 4.3.1 芦丁N-SDEDDS的配方考察 | 第125-127页 |
| 4.3.2 PGPR在疏水性膨润土上吸附的测定 | 第127-128页 |
| 4.3.3 芦丁N-SDEDDS最优配方的物理表征 | 第128-131页 |
| 4.3.4 稳定性考察 | 第131-132页 |
| 4.3.5 体外释放测定 | 第132-133页 |
| 4.3.6 体外经皮渗透研究 | 第133-134页 |
| 4.3.7 ATR-FTIR法研究载体与皮肤相互作用规律 | 第134-136页 |
| 4.3.8 皮肤组织病理学研究 | 第136页 |
| 4.3.9 细胞毒性考察 | 第136-137页 |
| 4.4 本章小结 | 第137-138页 |
| 参考文献 | 第138-142页 |
| 第五章 以短链醇醚混合物为内油相的槲皮素非水多重自乳化体系的制备与评价 | 第142-162页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第143页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第143页 |
| 5.1.2 仪器 | 第143页 |
| 5.2 实验方法 | 第143-148页 |
| 5.2.1 槲皮素体外分析测定方法的建立 | 第143-144页 |
| 5.2.2 槲皮素在不同介质中溶解度的测定 | 第144页 |
| 5.2.3 两相不互溶性考察 | 第144-145页 |
| 5.2.4 槲皮素N-SDEDDS的制备 | 第145页 |
| 5.2.5 乳液稳定指数(Emulsionstabilityindex,ESI) | 第145页 |
| 5.2.6 自乳化效率(Self-emulsificationefficiency,SEE) | 第145页 |
| 5.2.7 粘度测定 | 第145页 |
| 5.2.8 形貌结构分析 | 第145-146页 |
| 5.2.9 自乳化后粒径分析 | 第146页 |
| 5.2.10 自乳化后包封率和负载量测定 | 第146页 |
| 5.2.11 红外光谱分析(FTIR) | 第146页 |
| 5.2.12 粉末X射线衍射分析(XRD) | 第146页 |
| 5.2.13 差示扫描量热分析(DSC) | 第146页 |
| 5.2.14 稳定性考察 | 第146页 |
| 5.2.15 体外抗氧化性试验 | 第146-147页 |
| 5.2.16 体外释放测定 | 第147页 |
| 5.2.17 体外经皮渗透研究 | 第147-148页 |
| 5.2.18 细胞毒性考察 | 第148页 |
| 5.2.19 数据分析 | 第148页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第148-159页 |
| 5.3.1 槲皮素体外分析测定方法的建立 | 第148-150页 |
| 5.3.2 槲皮素在不同介质中溶解度的测定 | 第150-151页 |
| 5.3.3 两相不互溶性考察 | 第151页 |
| 5.3.4 槲皮素N-SDEDDS的配方考察 | 第151-153页 |
| 5.3.5 槲皮素N-SDEDDS最优配方的物理表征 | 第153-156页 |
| 5.3.6 稳定性考察 | 第156页 |
| 5.3.7 体外抗氧化性试验 | 第156-158页 |
| 5.3.8 体外释放测定 | 第158页 |
| 5.3.9 体外经皮渗透研究 | 第158-159页 |
| 5.3.10 细胞毒性考察 | 第159页 |
| 5.4 本章小结 | 第159-160页 |
| 参考文献 | 第160-162页 |
| 第六章 以短链醇混合物为内油相的槲皮素非水多重自乳化体系的制备与评价 | 第162-178页 |
| 6.1 材料与仪器 | 第163页 |
| 6.1.1 材料与试剂 | 第163页 |
| 6.1.2 仪器 | 第163页 |
| 6.1.3 实验动物 | 第163页 |
| 6.2 实验方法 | 第163-166页 |
| 6.2.1 两相不互溶性考察 | 第163页 |
| 6.2.2 槲皮素N-SDEDDS的制备 | 第163页 |
| 6.2.3 乳液稳定指数(Emulsionstabilityindex,ESI) | 第163页 |
| 6.2.4 自乳化效率(Self-emulsificationefficiency,SEE) | 第163-164页 |
| 6.2.5 自乳化时间测定 | 第164页 |
| 6.2.6 形貌结构分析 | 第164页 |
| 6.2.7 自乳化后粒径分析 | 第164页 |
| 6.2.8 自乳化后包封率和负载量测定 | 第164页 |
| 6.2.9 稳定性考察 | 第164页 |
| 6.2.10 色谱条件 | 第164页 |
| 6.2.11 体外溶出测定 | 第164-165页 |
| 6.2.12 大鼠药物动力学研究 | 第165-166页 |
| 6.2.13 数据分析 | 第166页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第166-175页 |
| 6.3.1 两相不互溶性考察 | 第166-167页 |
| 6.3.2 槲皮素N-SDEDDS的配方考察 | 第167-169页 |
| 6.3.3 自乳化时间测定 | 第169页 |
| 6.3.4 形貌结构及自乳化后粒径、负载量分析 | 第169-170页 |
| 6.3.5 稳定性考察 | 第170页 |
| 6.3.6 体外溶出测定 | 第170-171页 |
| 6.3.7 大鼠药物动力学研究 | 第171-175页 |
| 6.4 本章小结 | 第175页 |
| 参考文献 | 第175-178页 |
| 第七章 全文总结与展望 | 第178-182页 |
| 7.1 本论文主要研究结论 | 第178-181页 |
| 7.2 本论文创新之处 | 第181页 |
| 7.3 展望 | 第181-182页 |
| 致谢 | 第182-184页 |
| 附录Ⅰ攻读博士学位期间发表的论文和研究成果 | 第184-185页 |
