| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 缩略语对照表 | 第9-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-29页 |
| 1.1 草酸钙晶体的研究进展 | 第13-18页 |
| 1.1.1 草酸钙晶体的形成 | 第13-14页 |
| 1.1.2 草酸钙晶体的分布 | 第14-15页 |
| 1.1.3 草酸钙晶体的形态 | 第15页 |
| 1.1.4 草酸钙晶体的功能 | 第15-18页 |
| 1.2 草酸氧化酶 | 第18-20页 |
| 1.2.1 植物中的草酸氧化酶 | 第18页 |
| 1.2.2 草酸氧化酶的组成和结构 | 第18页 |
| 1.2.3 草酸氧化酶的功能 | 第18-20页 |
| 1.3 过氧化氢作为信号分子调节PCD | 第20-26页 |
| 1.3.1 细胞程序性死亡(PCD) | 第20-22页 |
| 1.3.2 通气组织形成中的PCD | 第22-26页 |
| 1.4 水烛的研究概况 | 第26-27页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第27-29页 |
| 第二章 研究材料和方法 | 第29-43页 |
| 2.1 研究材料 | 第29页 |
| 2.2 主要试剂和配制方法 | 第29-30页 |
| 2.3 主要仪器设备 | 第30-31页 |
| 2.4 研究方法 | 第31-43页 |
| 2.4.1 半薄切片 | 第31页 |
| 2.4.2 扫描电镜 | 第31-32页 |
| 2.4.3 氯化铈(CeCl_3)细胞化学定位H_2O_2 | 第32页 |
| 2.4.4 Ca~(2+)的细胞化学定位 | 第32页 |
| 2.4.5 过氧化氢的检测 | 第32-33页 |
| 2.4.6 用AT和DPI处理水烛的根状茎 | 第33页 |
| 2.4.7 水烛通气组织不同发育时期的OXO,POD,SOD,CAT,APX活性 | 第33-36页 |
| 2.4.8 草酸的含量检测 | 第36-37页 |
| 2.4.9 用实时定量PCR对TpOXO,CAT,Prx,APX,SOD和POD进行差异表达分析 | 第37-39页 |
| 2.4.10 基因克隆 | 第39-43页 |
| 第三章 研究结果 | 第43-63页 |
| 3.1 草酸钙晶体在通气组织形成中的形态和分布 | 第43-46页 |
| 3.1.1 草酸钙晶体的形态与分布 | 第43-45页 |
| 3.1.2 扫描电镜观察草酸钙晶体的形态 | 第45-46页 |
| 3.2 草酸钙晶体降解产生H_2O_2 | 第46-47页 |
| 3.3 H_2O_2的细胞化学定位 | 第47-49页 |
| 3.4 锑酸钾细胞化学技术定位Ca~(2+) | 第49-51页 |
| 3.5 通气组织形成过程中H_2O_2的浓度和抗氧化酶的活性 | 第51-52页 |
| 3.6 通气组织形成不同阶段草酸氧化酶活性和草酸含量 | 第52页 |
| 3.7 H_2O_2对通气组织形成的影响 | 第52-53页 |
| 3.8 通气组织形成过程中TpOXO,CAT,Prx,APX,SOD和POD的表达分析 | 第53-54页 |
| 3.8.1 RNA质量的检测 | 第53页 |
| 3.8.2 RNA反转录及cDNA质量的检测 | 第53页 |
| 3.8.3 相关基因的表达 | 第53-54页 |
| 3.9 水烛TpOXO基因克隆 | 第54-63页 |
| 3.9.1 TpOXO基因的克隆 | 第55-56页 |
| 3.9.2 TpOXO的生物信息学分析 | 第56-63页 |
| 第四章 讨论与结论 | 第63-69页 |
| 4.1 CaO_x晶体与通气组织的形成密切相关 | 第63-64页 |
| 4.1.1 CaO_x晶体的分布 | 第63页 |
| 4.1.2 CaO_x晶体的形态 | 第63-64页 |
| 4.2 CaO_x晶体降解产生H_2O_2 | 第64-65页 |
| 4.2.1 CaO_x晶体与H_2O_2的关系 | 第64页 |
| 4.2.2 草酸氧化酶与草酸,过氧化氢的关系 | 第64页 |
| 4.2.3 H_2O_2与抗氧化酶的关系 | 第64-65页 |
| 4.3 H_2O_2可诱导通气组织PCD | 第65-66页 |
| 4.4 Ca~(2+)调节CaO_x晶体的产生 | 第66页 |
| 4.5 结论 | 第66-69页 |
| 参考文献 | 第69-87页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第87-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
