| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第7-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-22页 |
| 1.1 植物对水涝低氧耐受性的研究进展 | 第11-15页 |
| 1.1.1 洪涝对植物造成的危害 | 第11页 |
| 1.1.2 植物对水涝胁迫的遗传学适应 | 第11-13页 |
| 1.1.3 水涝胁迫下植物不同的存活策略 | 第13-14页 |
| 1.1.4 水涝胁迫引起植物代谢发生变化 | 第14页 |
| 1.1.5 水涝胁迫引起植物酶系统发生变化 | 第14-15页 |
| 1.2 植物低氧感知机制研究进展 | 第15-18页 |
| 1.2.1 低氧直接感知机制 | 第15-16页 |
| 1.2.2 低氧间接感知机制 | 第16页 |
| 1.2.3 N-端规则是植物感知低氧的分子机制 | 第16-18页 |
| 1.3 硫化氢的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.3.1 植物细胞中H_2S的合成与代谢 | 第18-19页 |
| 1.3.2 硫化氢参与调节多种生物和非生物胁迫 | 第19-21页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第21-22页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第22-28页 |
| 2.1 实验材料和试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.1 材料、表达载体和菌株 | 第22页 |
| 2.1.2 材料培养和试剂 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-28页 |
| 2.2.1 水涝处理 | 第23页 |
| 2.2.2 组织染色 | 第23-24页 |
| 2.2.3 电导率测量 | 第24页 |
| 2.2.4 O~(2-)含量测定 | 第24页 |
| 2.2.5 H_2O_2含量测定 | 第24页 |
| 2.2.6 ROS清除系统SOD、APX、CAT酶活检测 | 第24-25页 |
| 2.2.7 H_2S代谢酶活性检测 | 第25页 |
| 2.2.8 H_2S含量检测 | 第25页 |
| 2.2.9 实时荧光定量PCR | 第25-26页 |
| 2.2.10 农杆菌介导的拟南芥转化 | 第26页 |
| 2.2.11 转基因拟南芥的筛选繁殖 | 第26页 |
| 2.2.12 DNA提取和PCR鉴定 | 第26-27页 |
| 2.2.13 植物根尖细胞内源H_2S荧光染色 | 第27-28页 |
| 第三章 实验结果 | 第28-41页 |
| 3.1 H_2S预处理能够提高拟南芥在水涝低氧胁迫下的存活率 | 第28页 |
| 3.2 H_2S合成突变体des1-1 对水涝低氧胁迫更敏感 | 第28-30页 |
| 3.3 H_2S预处理降低水涝低氧胁迫下ROS的积累并增强细胞膜完整性 | 第30-33页 |
| 3.4 H_2S预处理提高水涝胁迫下拟南芥抗氧化系统的能力 | 第33-34页 |
| 3.5 水涝能够提高内源H_2S含量并影响H_2S代谢关键酶活性 | 第34-36页 |
| 3.6 H_2S预处理能够提高N-端规则基因的表达 | 第36-37页 |
| 3.7 H_2S预处理能够提高发酵途径基因的表达 | 第37页 |
| 3.8 35S::DES1过表达系的建立 | 第37-39页 |
| 3.9 35S::DES1过表达系表现出更强的水涝耐受性和更高的内源H_2S含量 | 第39-41页 |
| 第四章 讨论 | 第41-45页 |
| 4.1 H_2S预处理增强了拟南芥水涝低氧胁迫的耐受性 | 第41-42页 |
| 4.2 H_2S预处理能够增强水涝胁迫下拟南芥ROS的内平衡能力和细胞膜的完整性 | 第42-43页 |
| 4.3 水涝低氧胁迫能够刺激内源H_2S的产生 | 第43页 |
| 4.4 过表达DES1基因能够提高内源H_2S含量进而增强拟南芥的水涝耐受性 | 第43-44页 |
| 4.5 H_2S对N~-端规则及其靶蛋白基因表达水平的影响 | 第44-45页 |
| 第五章 结论与展望 | 第45-47页 |
| 5.1 结论 | 第45页 |
| 5.2 展望 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 附录 | 第54-55页 |
| 在学期间的研究成果 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
