| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 1 前言 | 第9-14页 |
| 1.1 研究背景 | 第9页 |
| 1.2 AA组野生稻 | 第9-10页 |
| 1.3 尼瓦拉野生稻(O.nivara)的主要优良性状 | 第10-11页 |
| 1.4 野生稻为供体的染色体片段代换系的构建 | 第11-12页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第12-14页 |
| 2 尼瓦拉野生稻(O.nivara)单片段代换系的构建 | 第14-31页 |
| 2.1 引言 | 第14页 |
| 2.2 材料与方法 | 第14-24页 |
| 2.2.1 材料 | 第14-16页 |
| 2.2.2 供体与受体亲本多态性标记 | 第16-19页 |
| 2.2.3 单片段代换系的构建方案 | 第19-20页 |
| 2.2.4 主要试剂及仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.2.5 DNA的提取 | 第21页 |
| 2.2.6 PCR扩增 | 第21页 |
| 2.2.7 电泳 | 第21-22页 |
| 2.2.8 银染和结果记录 | 第22页 |
| 2.2.9 作图软件 | 第22-23页 |
| 2.2.10 代换片段长度的计算 | 第23-24页 |
| 2.3 结果 | 第24-29页 |
| 2.3.1 供试材料的片段追踪和背景检测 | 第24-26页 |
| 2.3.2 单片段代换系在染色体上的覆盖情况 | 第26-29页 |
| 2.3.3 单片段代换系代换片段长度分布 | 第29页 |
| 2.4 小结 | 第29-31页 |
| 3 单片段代换系主要性状QTLs鉴定 | 第31-55页 |
| 3.1 引言 | 第31-32页 |
| 3.2 材料和方法 | 第32-36页 |
| 3.2.1 材料 | 第32-34页 |
| 3.2.2 田间实验方法 | 第34页 |
| 3.2.3 性状调查方法 | 第34页 |
| 3.2.4 QTL的鉴定方法 | 第34-35页 |
| 3.2.5 QTL定位及遗传效应计算 | 第35-36页 |
| 3.2.6 QTL的命名方法 | 第36页 |
| 3.2.7 数据处理 | 第36页 |
| 3.3 结果 | 第36-55页 |
| 3.3.1 抽穗期QTL的位置和效应 | 第37-38页 |
| 3.3.2 有效穗数QTL位置和效应 | 第38-39页 |
| 3.3.3 一次枝梗数的QTL位置和效应 | 第39-40页 |
| 3.3.4 穗长QTL的位置和效应 | 第40-41页 |
| 3.3.5 株高的QTL位置和效应 | 第41-42页 |
| 3.3.6 结实率QTL的位置和效应 | 第42-43页 |
| 3.3.7 剑叶宽QTL的位置和效应 | 第43页 |
| 3.3.8 剑叶长QTL的位置和效应 | 第43-44页 |
| 3.3.9 穗颈长QTL的位置和效应 | 第44-45页 |
| 3.3.10 穗粒重QTL的位置和效应 | 第45-47页 |
| 3.3.11 着粒密度QTL及其位置和效应 | 第47页 |
| 3.3.12 谷粒长QTL及其位置和效应 | 第47-49页 |
| 3.3.13 谷粒宽QTL及其位置和效应 | 第49-50页 |
| 3.3.14 谷粒长宽比QTL及其位置和效应 | 第50-52页 |
| 3.3.15 SSSLs检出的QTL在染色体上的分布 | 第52-53页 |
| 3.3.16 14个性状检出QTLs在染色体上的分布 | 第53-55页 |
| 4 讨论与结论 | 第55-60页 |
| 4.1 讨论 | 第55-59页 |
| 4.2 结论 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-69页 |
| 附录 | 第69-89页 |
